5()g XXIII. Kiiltiu-mediL'ii für Pilzknlturen. 



Kaliumnitrat 1 g auf 700 com Wasser i). Als Normalflüssigkeit aus Zucker, 

 Ammoniak und Asche, die sich für die meisten ohne Gärung verlaufenden 

 Kulturversuche eignet, kann folgende bezeichnet werden: Wasser 100 ccm, 

 Zucker 3 g, Ammoniumtartrat 1 g, mit Phosphorsäure neutralisierte Asche 

 von Erbsen, Weizenkörnern oder Zigarren 0,4 g oder Hefeasche in etwas 

 geringerer Menge 2). Auch Hefepilze gedeihen vortrefflich in einer schwach- 

 sauren Flüssigkeit; folgende Nährlösung ist für sie geeignet; Wasser 

 100 ccm, Zucker 15 g, Salpeters. Ammoniak 1 g, saures phosphors. Kali 

 0,5 g, dreibasisch ■ phosphors. Kalk 0,05 g und schwefeis. Magnesium 0,25 g 

 (oder krist. schwefeis. Magnesium 7 HgO enthaltend, 0,5 g^). — Die An- 

 forderungen, welche die verschiedenen Pilze an das Substrat stellen, können 

 somit verschieden sein, und nur längere Erfahrung belehrt über die richtig 

 zu treffende Wahl der Nährlösung. Im allgemeinen wird aber der Standort 

 des Pilzes uns in der Wahl leiten, wir werden dem auf Mist wachsenden 

 Pilz beispielsweise Mistdekokte, dem auf faulenden Blättern wachsenden 

 Blattaufgüsse bieten. 



Gilt es, die Beobachtung längere Zeit unter dem Mikroskop fort- 

 zusetzen, so lassen sich flüssige Nährstoffe frei auf dem Objektträger nicht 

 verwenden, da sie der Verdunstung und der Infektion durch fremde Keime 

 aus der Atmosphäre ausgesetzt sind. Dann hilft, wie bei den Bakterien 

 (vgl. S. 473), Zusatz von Gelatine o. ä. zur Kulturlösung. Es wird soviel 

 reinste Gelatine oder Karagheen in der kochenden Nährlösung aufgelöst, 

 daß letztere bis zu etwa 25° flüssig bleibt und weiter erkaltend fest wird. 

 Hat man eine Spore auf dem Objektträger in schon besprochener Weise 

 übertragen, so setzt man ihr einen Tropfen eben noch flüssiger Nährlösung 

 auf und breitet ihn so dünn aus, daß die Beobachtung der Spore selbst 

 bei starker Vergrößerung möglich ist. Oder man macht die Aussaat auf 

 ein Deckglas, -das man hierauf umkehrt und mit den Rändern auf eine 

 feuchte Kammer legt. Die Sporen keimen in den gelatinierten Nähr- 

 lösungen in gewohnter Weise, oft noch besser als in flüssigen. Bei Aus- 

 saaten ohne Deckglas empfiehlt es sich, über dem Präparat am Tubus des 

 Mikroskops einen kleinen Schirm anzubringen, der das Präparat vor fremden 

 Keimen schützt. Man kann im übrigen auch zu solchen dauernden Kul- 

 turen sterile Objektträger (s. a. S. 504) benutzen, die, durch Eintauchen 

 in flüssiges Nähragar, etwa Malz-Agar (5% Malzextrakt, 10% Agar), mit 

 einer sehr dünnen Schicht überzogen, in Schalen gelegt werden, wo sie 

 ankleben. Die betreffenden Pilzsporen sind darauf in entsprechender Ver- 

 dünnung mit sterilem Wasser auszusäen und Keimung und Wachstum bei 

 umgewendeter Schale zu beobachten. Die gewünschten Stadien können dann 

 mit Elemming schem Gemisch fixiert und weiter behandelt werden*). Es 

 sei darauf hingewiesen, daß viele Pilzsporen nur auf Gelatine, nicht aber 

 auf Agar keimen und weiter wachsen. Andererseits treten in Agar-Kul- 

 turen leichter Kopulationsvorgänge auf^). — Zum Zweck dauernder Be- 

 obachtung hat sich besonders die Verwendung von feuchten Kammern 

 bewährt. In vielen Fällen wird der von uns schon angewandte Papp- 



1) Ph. van Tieghem und G. le Momniee, 1. c. 1873, S. 266. 



2) C. NXgeli, Sitzber. d. math.-phys. Kl. d. Baj^r. Akad., 1880, S. 468, u. Unters, 

 über nied. Pilze. 1882, S. 61. 



3) Nach A. Meyer, vgl. bei C. Nägeli, 1. c. 1880, vS. 469, und 1. c. 1882, S. 61. 

 ") Nach H. Kniep, Zeitsclir. f. Bot., Bd. IX, 1917, S. 83, bzw. H. BüRGEFF, Eben- 



<Ui, B.l. XII, 1920, S. 3 uiid M. Hirmer, Ebenda, 1920, S. 658. S. a. Reg. IV Pilze. 

 5) Nach H. IvNiEP, Zeitschr. f. Bot., Bd. XI, 1919, S. 259. 



