g-j^^ XXIX. Pollenschlauchnachweis im Fruchtknotengewebe. 



Samenanlage von Aconitum. 



wünschten Entwicklungsgrad erreicht haben, auf dem Deckgläschen mit 

 Chrom-Essigsäure oder 2-proz. Osmiumsäure fixiert und nach kurzer 

 Wässerung durch Betropfen mit Aq. dest. etwa 1 Std. in einer Lösung von 

 Fuchsin und Malachitgrün in 25-proz. Alkohol färbt. Nach Auswaschen in 

 Alk. abs. folgt Übertragen in Xylol und Einschließen in Kanadabalsam. Gut 

 gefärbte Präparate zeigen das Pollenschlauchplasma und den vegetativen 

 Kern rot, das Plasma der generativen Zelle blaurot und den generativen Kern 

 lolau^). — Haben die Pollenschläuche, bis sie zum Embryosack gelangen, 

 bestimmte Gewebepartien des Stempels, bzw. der Samenanlage zu durch- 

 wachsen, so ist ihr Nachweis dort nicht immer leicht. Vielfach treten sie 

 aber, da sie plasmareicher sind, als die sie umgebenden Zellen, und die 

 Farbstoffe, mit denen die Präparate gefärbt werden, intensiver festhalten, 

 schon so deutlich hervor. So halten sie nach Färbung mit Safranin- 

 Gentianaviolett-Orange auch bei längerer Einwirkung des Orangefarbstoffs 

 im Gegensatz zu den umgebenden Zellen das Gentianaviolett besonders 

 stark fest^); bei Behandlung mit Heidenhain schem Eisen-Hämatoxylin treten 

 sie tiefschwarz aus dem benachbarten Gewebe hervor 3). Ferner kann ihr 

 in manchen Fällen beträchtlicher Gehalt an Stärke durch Anwendung von 

 Jodlösungen beim Studium des Pollenschlauch -Verlaufs wertvoll werden, 

 ebenso der Gehalt bestimmter Membranpartien des Pollenschlauchs an 

 Stoffen, der bewirkt, daß diese Membranteile im Gegensatz zur Umgebung 

 durch Anilinblau lebhaft gefärbt in den geeignet vorbehandelten Präparaten 

 (vgl. Reg. IV Pollenschlauch) deutlich hervortreten^). 



Wir wollen jetzt versuchen, uns mit dem Bau der Samenanlagen 

 bekannt zu machen und gleichzeitig die Befruchtungsvorgänge bei 

 Angiospermen zu verfolgen. Um die einzelnen Teile der Samenanlage 

 kennenzulernen, führen wir zunächst Querschnitte durch die Frucht- 

 knoten vom blauen Eisenhut, Aconitum N a p e 1 1 u s , oder von 

 einer anderen Aconitum- Art aus. Wir wählen eine im Verblühen be- 

 gi^iffene Blüte, streifen die übrigen Blütenteile ab und schneiden nun 

 gleichzeitig durch die 3 Fruchtknoten. Zu beachten ist, daß die 

 Schnitte wirklich rechtwinklig die Längsachsen der einzemen Frucht- 

 knoten treffen. Die Zahl der Schnitte muß eine recht große sein, 

 da es der Zufall nur fügen kann, daß wir eine Samenanlage richtig tref- 

 fen. Wir durchmustern die Schnitte und suchen uns die entsprechenden 

 aus. Falls der Schnitt nicht zart genug ist, können wir mit ein wenig 

 Kalilauge nachhelfen. Ist eine Samenanlage median getroffen, dann 

 sieht sie wie die in Fig. 236 dargestellte aus. Der Fruchtknoten ist 

 monomer, die Samenanlage entspringt einer randständigen Placenta. 

 Sie ist an ihr mit einem Stielchen, Funiculus (/), befestigt, dessen 

 freier Teil nur sehr geringe Länge besitzt, das im übrigen mit dem 

 Körper der Samenanlage sich verwachsen zeigt, an ilim die sog. 

 Samennaht, Raphe {r), bildend. An dem Körper der Samenanlage, 

 die dem Makrosporangium der Gefäßkryptogamen entspricht, unter- 

 scheiden wir vor allem die innere, kegelförmige Gewebemasse als 

 Knospenkern, Nucellus {n). Er wird von 2 Integumenten umhüllt, einem 



1) Fr. Herrig, Ber. d. Deutsch, bot. Ges., Bd. XXXVII, 1919, S. 450. 



2) Ch. H. Shattuck, Bot. Gaz., Bd. XL, 1905, S. 209. 



3) N. Albanese, Sitzber. Akad. Wiss. Wien, Math.-Nat. Kl., Bd. CXIII, 1. Abt., 

 6.54. 



*) L. JosT, Bot. Ztg., LXV. Jahrg., 1. Abt., 1907, S. 84. 



