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XXIX. Embryosack von Monotropa. 



über. An dem Körper der Samenanlage erkennen wir leicht den Nucellus {n) 

 wieder, die beiden Integumente {li und ie), die Mikropyle (m), in die hinein 

 sich der Scheitel des Nvxcellns warzenförmig fortsetzt. Der Funiculus ist 

 auf die Insertionsstelle reduziert, ein Leitbündel tritt in ihn ein und er- 

 lischt unter der Basis des Nucellus. Die Längsachse des Nucellus wird 

 von dem gestreckten Embryosack eingenommen. Von den Gegenfüßlerinnen 

 und dem Ei ist an dem frischen Präparat nichts zu sehen. (Sie sind in 

 unser Bild nach Alkohol-Material eingetragen.) 



Jetzt nehmen wir das Studium des Embryosack-Innern vor. 

 Das beste Objekt ist hierfür Monotropa Hypopitys, der 

 gemeine FichtenspargeP). Die blaßgelbe Pflanze trifft man nament- 

 lich in Kiefernwäldern nicht selten an; in manchen Gegenden ist sie 

 sehr verbreitet. Sie ist für die sonst schwierige Untersuchung des- 

 Embryosacks so günstig, daß wir keine Mühe 

 scheuen sollten, um die Pflanze zu erlangen. 

 Sie blüht im Juni und Juli und sollte nur 

 frisch untersucht werden. Sieht man sich ge- 

 zwungen, sie in Alkohol für später einzulegen, 

 so versetze man diesen mit Schwefeldioxyd, 

 da in reinem Alkohol das Objekt dunkelbraun 

 wird. Man leitet zu diesem Zweck Schwefel- 

 dioxydgas in Alkohol ein. Die ganze Operation 

 dauert 1 Min., wenn man Natriumsulf it (NaSOa) 

 in einem Gefäß mit etwa 80-proz. Schwefel- 

 säure übergießt und das sich entwickelnde Gas 

 in den Alkohol einführt; auf je 100 ccm Alko- 

 hol etwa 1/4 g Natriumsulfit 2). Die Pflanze 

 hat etwa 24 Std. in diesem Alkohol zu ver- 

 weilen mid wird dann in reinen Alkohol über- 

 geführt. — Die frischen Pflanzen können 

 übrigens längere Zeit gesund in einem Wasserglas ausharren. Ahn- 

 lich wie Monotropa verhalten sich die Pirola- Arten, doch sind die 

 Samenanlagen kleiner. — Der Querschnitt durch den unteren Teil 

 des oberständigen Fruchtknotens von Monotropa zeigt ihn vierfächerig. 

 Die Placenten sind stark angeschwollen und tragen an ihrer Ober- 

 fläche sehr zahlreiche, schmale, dicht aneinandergereihte Samen- 

 anlagen. Die beiden Placentenhälften in jedem Fach sind eine Strecke 

 weit durch eine radiale Trennungslinie gesondert. In dem oberen Teil 

 des Fruchtknotens reichen diese Trennungslinien bis zur Mitte und 

 stoßen hier aufeinander. Wir sehen nun vier starke, der Mitte je einer 

 Scheidewand aufsitzende Placentenpaare, die zwei benachbarten 

 Fächern angehören ; die Paare sind leicht mit den Nadeln voneinander 

 zu trennen. Die Samenanlagen für die Untersuchung gewinnen wir, 

 indem wir einen Teil der Fruchtknotenwand mit der Pinzette ab- 

 heben und von einer nunmehr freigelegten Placenta die Samenanlagen 

 mit der Nadel abstreifen. Wir bringen sie in reines Wasser oder 3-proz. 

 Zuckerlösung, in der sich die Samenanlagen länger halten. Entnehmen 



Fig. 237. Polygonum Orien- 

 tale, medianer Längsschnitt 

 durch eine Samenanlage. 

 Bedeutimg der Buchstaben 

 wie in der vorhergehenden 

 Figur. Vergr, 53. 



^) E. Strasbxjrger, Befr. u. Zellt., 1877, S. 34ff. ; Neue Untersuchungen über 

 den Befruchtmigsvorgang b. d. Phanerogamen, 1884, S. 71; ferner Bot. Ztg., LVIII. 

 Jahrg., 1900, 2. Abt., Sp. 298; K. ShibatA, Flora, Bd. XO, 1902, S. 61. 



«) E. OVEBTON, Zeitschr. f. wiss. Mikrosk., Bd. VII, 1890, S. 9. 



