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Remster IV. Bakterien. 



m. Eiweiß geklärt. Von Vorteil ist ein 

 Znsatz V. Ojä^o Glyzerin. Bei Agarkul- 

 tnren wird d. Gelatine dvirch 10 g Agar 

 (pro 1) vertreten. H. MoLISCH. Leuch- 

 tende Pflanzen, 2. Aufl., 1912, S. 67. — 

 Besser als diese Fleischpepton- Gelatine 

 ist in manchen Fällen folg. Nährsubstrat : 

 1 1 H.^0, 0,25 g MgS04, 0,25 g KoHSG^, 

 10 g Pepton, 20 g Zucker, 100 g Gelatine. 

 Diese Zuckerpepton-Gelatine-Lös. wird 

 m. Natronlauge schwach alkal. gemacht. 

 H. Molisch, "Ebenda, S. 105. — Vor- 

 zügl. Gedeihen u. Leuchten einer v. Nord- 

 seefischen gezüchteten Bakterienart ließ 

 sich i. einer m. 3% Kochsalz versetzten 

 Fischabkoch. v. schwach alkal. Reakt. 

 erreichen. H. MOLISCH, Verh. d. Ges. 

 Deutsch. Naturf. und Ärzte, 85. Vers., 

 Wien, 1913, Tl. Teil, 1. Hälfte. 



Bakterien. Kulturmedien f. Nitrat- u. Ni- 

 tritbakterien lassen sich gewinnen, wenn 

 man d. i. nachfolg, angegeb. Kulturmed. 

 m. einer Bodenprobe infiziert u. dann wie- 

 derholt i. d. gleich. Med. überimpft. 



— ■ — f. Nitratbakterien. 1 1 Wasser, 1 g 

 salpetrigs. Natron, 0.5 g Dikaliumphos- 

 phat, 0,3 g Magnesiumsulfat, 0,5 g Koch- 

 salz, 0,4 g Eisensiilfat, 1 g gebrannte 

 Soda. A. Fischer, Vorles. üb. Bakterien. 

 2. AvLÜ., 1903, S. 186. 



f. Nitritbakterien. 1 1 W 



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Ammonsulfat, 1 g Dikaliumphosphat, 

 0,5 g Magnesiumsulfat, 2 g Kochsalz, 

 0,4 g Eisensulfat. Zu je 50 ccm d. Lö- 

 sung noch 0,5 g Magnesiumkarbonat. 

 A. Fischer, Vorles. üb. Bakterien, 2. 

 Aufl., 1903, S. 186. 



f. Pui-purbakterien, z. d. Schwefel- 

 bakterien gehörig. 1 1 Flußwasser (b. 

 marin. Form. Seewasser), 18 g Agar (od. 

 100 g Gelatine), 5 g Pepton, 5 g Dextrin 

 od. Glyzerin. H. Molisch, Die Purpur- 

 bakterien, Jena 1907, S. 11. Dort auch 

 näh. .Angaben üb. ihre Beschaffung lISw. 



- — f. Schwefelbakterien 456. Man kann 

 sie leicht erhalten, wenn man eine Nähr- 

 lös. V. d. Zusammensetz. : Aq. dest. 

 100 ccm, Natriiunthiosulfat 0,5 g, Natri- 

 umbikarbonat 0,1 g, Sek. Ka,liumphos- 

 phat 0,02 g, Ammoniumchlorid 0,01 g, 

 Magnesiumchlorid 0,01 g, reichl. m. Gra- 

 ben- bzw. Kanalwasser od. einer Spur 

 Schlamm infiziert u. d. Ganze i. einen 

 Thermostaten bei 28 — 30" bringt. Nach 

 2 — 3 Tagen ist d. Kultnrflüssigk. m. einer 

 Schwefelschicht bedeckt, die zahlr. Bak- 

 terien führt. M. W. Belterinck, Zen- 

 tralbl. f. Bakt., II. Abt., Bd. XI, 1904, 

 S. 595. S. a. oben bei Purpurbakterien. 

 Üb. Kulturmed. f. marine Formen vgl. 

 A. Nathansohn, Mitt. zool. Stat. Neapel, 

 Bd. XV, 1902, S. 655. 



Stickstoffbindende Bakterien, wie 



Azotobacter chroococcum, lassen sich 



unschwer erlangen, wenn man eine dünne 

 Schicht einer Nährlös. v. d. Zusammen - 

 setz. 100 ccm Leitungswasser, 2 g Mannit 

 u. 0,02 g alkal. Dikaliumphosphat i. 

 einem EELENMEYER-Kolben mit 0,1 bis 

 0,2 ß frisch. Gartenerde infiziert u. bei 

 27 bis 30» stehen läßt. Vgl. M. W. Bei- 

 .TERINCK, Zentralbl. f. Bakt., II. Abt., 

 Bd. VIl, 1901, S. 568. S. a. Th. PvEMY 

 u. G.RösiNG, Ebenda, Bd. XXIX, 1911, 

 S. 36, Bd. XXX, 1911, S. 349 bzw. 371; 

 fem. d. Zusammenstellg. b. E. KÜSTER, 

 Kultur der Mikroorg., 3. Aufl., 1921, 

 S. 200. 

 Bakterien. Kulturmedien. An Stelle v. 

 Fleischextrakt, Bouillon u. ä. läßt sich, 

 wenn Schwierigkeiten b. der. Beschaffg. 

 bestehen, m. gutem Erfolg auch getrock- 

 nete Hefe verwenden, d. i. gebrauchsfert. 

 Form V. E. Merck, Darmstadt, unter Faex 

 medicinalis siccata z. beziehen ist. Das 

 Hefepulver wird i. d. auf d. Verpackung 

 angegeb. Menge 1 Std. lang digeriert, 

 dann ebenfalls 1 Std. i. Dampf topf od. 

 Autoklaven gekocht u. filtriert. Die wei- 

 tere Vorbereitg. d. Hefebrühe z. Nähr- 

 agar od. anderen Nährböden erfolgt i. d. 

 gleich. Weise wie b. Fleischextrakt (s. S. 

 473). Reiter. Deutsche med. Wochen- 

 schr. Bd XLIII, 1917, S. 1201. 



— Locken in Kapillaren 472. 



— Mittel, sie festzustellen bzw. z. unter- 

 scheiden 460. 472. 



— ■ Negativfärbimg. Schwer färbbare Ba^k- 

 terien kami man auch auf d. Wege d. 

 ,, Negativfärbimg" hell auf dunkl. Grund 

 sichtbar machen, indem man emen Trop- 

 fen der d. Bakterien enthaltenden Flüs- 

 sigk. m. einem Tropfen einer gesätt. 

 wässr. Lös. eines Anilinfarbstoffs, etwa 

 Kongorot u. Nigrosin mischt, auf d. 

 Objektträg. eintrocknen lä.ßt u. i. Ka- 

 nadabalsam einbettet. Es heben sich 

 da d. Bakterien hell auf d. roten bzw. 

 blauschwarzen Hintergrund ab. H. FI- 

 SCHER, Zeitschr. f. wiss. Mikrosk., Bd. 

 XXVIT, 1910, S. 475. 



— Plasmolyse, Plasmoptyse 455. 



— Plattenkultur 476. 



— Reagenzglasknltur 478. 



— Reinkultur 467. 



— Sauerstoffnachw. durch Bakterien 472. 



— Schnittfärbung 466. 



— Sporen. Fixierg. u. Färbg. 462 ff. 469. 



— • vereinfachte Methode. Man fi- 

 xiert d. spcrenhalt. Bakterienmat. auf d. 

 Deckgrlas, taucht d. Deckglaspräparat 

 f. etwa 1 — 3 Min. i. GRAMsche Lös., 

 dann f. 1 Min. i. Alkohol u. wäscht i. 

 fließ. Wasser aus. Bei d. Färbg. beob- 

 achte man folgendes: Gebraucht man 

 Methylenblaulösung, dann läßt man sie 

 30 Sek. wirken. Karbolfuchsinlösung 

 läßt maii l Min. lang b. schwach. Er- 



