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Register IV. Phenolphtalein — Phosphorsäure. 



bewahrt werden kann. Die nassen Zel- 

 loidinschiiitte werden auf solche Objekt- 

 träger geleot, reihenweise geordnet u. 

 durch Andrücken m. Fheßpapier v. d. 

 Flüssigk. befreit. Sollten sich dabei 

 einzelne Schnitte nicht glatt angelegt 

 haben, so betupft man sie wieder m. Alk. 

 u. versucht sie m. Fließpapier glattzu- 

 drücken. Auf d. Schnitte wird nmi ein 

 dünner, i. 10-proz. FormoUös. getaucht. 

 Papierstreifen gelegt u. m. emem zweit. 

 Objektträg. angedrückt. Die Zelloidin- 

 schnitte haften nach wenig. Sek. d. 

 Unterlage so an, daß sie i. and. Flüssigk. 

 belieb, weiterbehandelt werden können. 

 Will man bes. sicher gehen, so bringt 

 man d. Schnitte noch auf eiiiige Min. od. 

 länger i. ein Standgefäß m. 10-proz. 

 Formollös. (1 T. Formalin [40-proz. For- 

 moUös.] auf 3 T. Wasser), od. setzt sie 

 i. einem verschluss. Standgefäß, dessen 

 Boden m. Formalin bedeckt' ist, min- 

 destens 1 Std. Formalindämpfen aus u. 

 bringt sie dann erst i. wässr. Formollös. 

 Das Zelloidin kann b. d. Weiterbehandlg. 

 d. Präp. i. Äther-Alk. gelöst werden, 

 ohne daß ein Loslösen d. Schnitte z. be- 

 fürcliten ist. Störimgen b. d. Färbg. d. 

 PräjD. durch d. dünne Gelatineschicht 

 sind ausgeschlossen, denn d. Gelatine 

 gibt jede etwa angenommene Farbe 

 leicht wieder ab. Nach Olt, Zeitschr. 

 f. wiss. Mikrosk., Bd. XXIII, 1906, 

 S. 323. 

 Phenolphtalein i. alkohol. Lös. (1 T. auf 

 30 T. 30-proz. Alk.), dient als Indikator 

 f. Alkalien, mit denen es violett-rote 

 Färbg. annimmt. Vgl. H. Beckurts, 

 Methoden der Maßanalyse, 1913. Auch 

 O. Wakbubg, Unters, bot. Inst. Tübin- 

 gen, Bd. II, 1886, S. 66. S. a. Curcuma- 

 papier. 

 Phenylhydrazin, essigsaures, zum Zucker- 

 nachweis 182; vgl. a. SENFTsche Me- 

 thode. 

 Phlobaphene 305. Bhadenfarbstoffe. In d. 

 Rinde d. Bäume deren braunrote Färbg. 

 veranlassend; s. u. a. HuSEMANN u. 

 Htlgee, Die Pflanzenstoffe, 2. Aufl., 

 Bd. I, S. 261. Aiißerdem bedingen sie d. 

 gelbbraunen, braunen u. dmikleren Far- 

 ben vieler Samen (z. B. Leguminosen), 

 üb. deren besondere Natur aber noch 

 keine abschließenden Untersuchimgen 

 vorliegen. Der rote Farbstoff d. Samen- 

 schalen V. Abrus precatorius soll gleich- 

 falls gerbstoffart. Natur sein. Fr. Cza- 

 pek, Biochem.; 2. Aufl., Bd. III, 1921, 

 S. 514, bzw. 3. Aufl., 1922. 

 Phlorogluzin 136. 181. 191. 200. 267. Ähnl. 

 wie Phlorogluzin reagieren Orzm u. Re- 

 sorzin, doch ist d. Färbg. b. diesen mehr 

 blauviolett u. weniger scharf. Ähnl. 

 wie Gerbstoffe speichert d. Phlorogluzin 



Methylenblau auf, wobei ein tiefblauer 

 amorph. Niederschi, entsteht, d. i. kalt. 

 AVasser fast nicht, i. Alk. aber leicht lösl. 

 ist. Waage, Ber. Deutsch, bot. Ges., 

 Bd. VIII, 1890, S. 252. S. a. Vanillin. 

 Phlorogluzin. Eindringen i. d. Plasma 200. 



— Methylenblau- Auf si^eicherung 191. 



— -Reaktion 267. Zum Nachweis d. Phlo- 

 rogluzins bes. empfohlen: p-Dimethj^l- 

 aminobenzaldehyd, das schneller wirkt, 

 als die meist verwendete Vanillüi- Salz- 

 säure (s. diese), u. ebenfalls Rotfärbg. 

 veranlaßt. Auch i. Gewebeschnitten tritt 

 d, Reaktion schärfer, rascher u. besser 

 lokalisiert auf. Man verwendet eine Lös. 

 von 0,5 g p-Dim. i. 8,5 g konz. Schwefel- 

 säure, d. man 8,5 g Wasser , zufügt . 

 M. JOACHIMOVITZ, Biochem. Zeitschr., 

 Bd. LXXXII, S. 324. Dort auch An- 

 gaben üb. d. Verbreitg. d. Phl. i. Pflan- 

 zenreich. 



— u. Salzsäure. Holzstoffreaktion 258. 

 267. 290. 292. 297. 308. 320. 565. 



Phosphor, Lokalisation, Nachweis 186. 

 Phosphormolybdänsäure. Eiweißreakt. 137. 

 Phosphormolybdänsaurec Ammoniak. Er- 

 kenntmg desselben 185. 



— Natron i. Salpetersäure. Reagens auf 

 Eiweißstoffe 137. 



Phosphorsäure. Die an eiweißart. u. sonst 

 organ. Substanzen gebvmd. Phosphor- 

 säure läßt sich nur i. d. Asche nach- 

 weisen. Somit kann beim Ausbleiben d. 

 Phosphorsäure-Reakt. nur d. Aschen- 

 analyse i. letzt. Instanz üb. d. Vorhan- 

 densein od. d. Fehlen d. Phosphorsäure 

 entscheiden. Die Asche wird i. Salzsäure 

 aufgelöst, bis z. voll. Eintrocknen er- 

 hitzt Vi. dann m. Ammoniiunmolybdat 

 behandelt. Von organ. Phosphorv^er- 

 bindg. finden sich i. d. Pfl. bes. d. 

 Nukleoalbumine vor. S. Näh. bei L. 

 Iwanoff, Jahrb. f. wiss. Bot., Bd. 

 XXXVI, 1901, S. 356. — Vgl. i. übr. 

 S. 185. 



— Einwirkimg auf Zellulose 172. 



— Nachweis 186. 



— i. Nährlös. 508. 



Weitere Methoden f. Phosphomach- 



weis: Behandig. d. Schnitte etwa 24 Std. 

 m. FRESENiusscher Lös. (s. diese). Wa- 

 schen m. verd. Salpetersäure od. m. Was- 

 ser, Überführen i. eine frisch bereitete 

 1— 4-proz. Lös. V. salzsaurem Phenyl- 

 hydrazm. Ein grünlicher Niederschi, an 

 d. Stellen, wo Phosphor war. A. B. Ma- 

 calltjm. Erg. d. Physiol., Bd. VII, 1908. 

 Molybdän-Hydrazin - Hämatoxylinfärbg. 

 nach H. Weylakd, Jahrb. f. wiss. Bot., 

 Bd. LI, 1912, S. 48. Nach Härtg. d. Ma- 

 terials i. Alk., 24-stünd. Behandig. i. 

 FRESENiusscher Lös. (s. diese). Auswa- 

 schen i. leicht m. Salpetersäure ange- 

 säuertem Wasser, Einlegen f. 10 — 15 Min. 



