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E. Zu uz. 



+ 1 c»i^ einer ^/.."/Qi^en Lösung von Plienolphtalein in öOVoi"'^™ Alkohol: 

 die Mischung wird mittelst liarvt- oder Natronlauge genau neutralisiert) 

 oder löcm» einer Thymolphtalein-Forniolmischung (25 on^ Alkohol + 50 cw«^ 

 Handelsformol + o cm^ einer i/gVooiric» alkohohschen Thymolphtaleinlösung; 

 die Mischung wird genau neutralisiert) gefügt. Dann versetzt man die 

 Flüssigkeit mit Vs normaler Ätzbarytlösung unter Umscliütteln bis zur Rot- 

 färbung bei Phenolphtaleinanwendung, bis zur deutlichen blauen Farbe bei 

 Gebrauch von Thymolphtalein, fügt nachträglich noch einen bekannten Über- 

 schuß der \ 5 normalen Ätzbarytlösung hinzu und titriert schließlich mit 

 i/g normaler Salzsäure zurück. Die Titrierungen erfolgen bis zum Erhalten 

 derselben Farbe wie in einer Kontrollflüssigkeit, welche 20 cm^ destiUierten 

 Wassers statt der untersuchten Verdauungsflüssigkeit enthält. Die bei der 

 Titrierung der Kontrolllösung etwa verbrauchte Menge der \r, normalen 

 Ätzbarytlösung wird von der zum Neutralisieren der \'erdauungsflüssigkeit 

 nötigen abgezogen. Die den \ erdauungsflüssigkeiten im voraus zugesetzten 

 Salzsäure- oder Alkalimengen müssen selbstverständlich bei der Berechnung 

 der Analyse in Betracht gezogen werden. 



Falls keine Karbonate oder Phosphate in dem Verdauungsgemische 

 vorhanden sind, so kann man es ebensogut mittelst Y,o normaler Natron- 

 lauge als mittelst Ätzbaryt titrieren. Die Natronlauge ist der Barytlösung 

 bei der Titrierung von phenylalaninreichen Mischungen vorzuziehen. Bei 

 der Titrierung gewisser Proteine und ihrer ersten Spaltungsprodukte soll 

 man die '/lo noi-male Natronlauge statt der Y^ normalen Ätzbarytlösung 

 verwenden, um die Ausfällung schwer löslicher Barytverbindungen, besonders 

 beim (iebrauche von Thymolphtalein, zu umgehen. 



Das I'rolin = y.-Pyrrolidinkarbousäure braucht bei der Phenolphtalein- 

 titrierung nur 80% wi^»^! '»^i ^^'i" Thymolphtaleintitrierung nur ;j2Vo dei' 

 berechneten Barytmenge. Der dadurch bewirkte Fehler ist ohne Bedeutung, 

 wenn das Prolin, wie in den meisten Fällen, nui" einen kleinen Bruchteil 

 der gesamten Aminosäuremenge ausmacht; ist es hingegen in reichlicherer 

 Menge vorhanden, so kann man die F'ormoltitrierung nicht anwenden. 



Bei der Titrierung mit Natronlauge und Phenolphtalein verbraucht 

 Tyrosin lO^^^fjo/o d?'- i)erechneten Natronlauge, bei der Thymolphtalein- 

 titrierung l):i7'5o/o- Bei Anwesenheit größerer Tyrosinmengen ist demnach 

 die Methode unl)rauchbar. Beim \'orhan(l('nsein kleiner Mengen darf man 

 die Titrierimg nur mit Natronlauge und Phenolphtalein vornehmen. Auch 

 bei der Formoltitrierung der bei einer gewöhnlichen Proteinspaltung ent- 

 standenen Mischung von Aminosäuren kann das anwesende Tyrosin einen 

 Fehler verursachen. Derselbe ist aber gewöhnlich nur klein und geht über- 

 dies nach Söremen in entgegengesetzter Richtung von der der übrigen 

 Fehlerquellen der Methode. Da Sörtnsen zufolge freie Phenolgruppen während 

 der Proteolyse wahrscheinlich nicht gebildet werden, ist dieser Fehler voraus- 

 sichtlich von ungefähr derselben Bedeutung vor und nach der Proteolyse. 

 Wie dem auch sei, der Umschlag ist bei Tyrosinanwesenheit weniger scharf 

 als sonst. 



