20 R. Sielieck. 



reichen, werden im allgemeinen zwei prinzipiell verschiedene Wege einge- 

 schlagen: Entweder man durchblutet die Organe künstlich oder man 

 läßt sie direkt in einer Nährlösung schwimmen. Da die Methoden 

 der künstlichen Durchblutung in einem anderen Teile dieses Handbuches 

 behandelt werden i), beschränke ich mich auf Angaben, die für die andere 

 Anordnung zu beachten sind. 



Die Organe müssen möglichst klein sein, denn nur dann kann 

 man damit rechnen, daß alle Zellen gleichmäßig mit Sauerstoff versorgt 

 werden. Diese geschieht ja lediglich durch Diffusion des Sauerstoffes; sind 

 die Zellen durch eine zu dicke Schicht von der gesättigten Lösung ge- 

 trennt, so wird der von ihnen verbrauchte Sauerstoff nicht rasch genug 

 ersetzt. Da die Geschwindigkeit der Diffusion außerdem vom Partiardi-uck 

 abhängig ist, muß dafür Sorge getragen werden, daß der Sauerstoff- 

 partiardruck in der Nährlösung während des Versuches möglichst wenig 

 sinkt. Sonst leiden die Zellen im Innern des Organes infolge zu langsamer 

 Diffusion an Sauerstoffmangel. Durch diese Verhältnisse kann bei Ver- 

 suchen mit Organen eine Abhängigkeit der Oxydationen in der Zelle vom 

 Sauerstoff partiardruck vorgetäuscht w^erden, während es sich tatsächlich 

 um eine Erstickung eines Teiles der Zellen handelt. 



Außer der Sauerstoff Versorgung spielt die Temperatur, bei der die 

 Organe gehalten werden, eine große Rolle. Man kann ganz allgemein 

 sagen, daß überlebende Organe um so empfindlicher sind, je höher die 

 Temperatur ist. Schon aus diesem Grunde ist es immer vorteilhaft, über- 

 lebende Organe von Kaltblütern zu benützen. Diese können meist ohne 

 Schaden auf beliebige Temperaturen bis zu 0*^ abgekühlt werden. Bei 

 — 40 kann man z. B. Froschmuskeln mehrere Tage aufbewahren, ohne 

 daß die Erregbarkeit merkUch abnimmt. Es empfiehlt sich, die Organe 

 außerhalb der eigentlichen Versuchsperioden immer bei solch niederen 

 Temperaturen aufzubewahren und die Versuchstemperatur so nieder zu 

 wählen, als es die besondere Aufgabe erlaubt. 



Es sind nun noch einige Bemerkungen über die Nährlösungen 

 nötig. 



Für Froschorgane ist im allgemeinen eine einer 0"T%igen NaCl- 

 Lösung isotonische Ringerlösung (ß'b g Na Gl, 0'2 (/ KCl, 0"3 .9 CaCla, 

 1000 Wasser) am meisten zu empfehlen. Die Lösung wird mit NaHCOg 



oder, wenn keine störende COg-Entwäcklung zu befürchten ist, mit — -n- 



NaOH-Lösung neutralisiert, so daß sie mit Phenolphthalein eben schw'ach 

 rosa, mit Neutrah'ot gelbe Farbe gibt. Soll der Einfluß verschiedener Re- 

 aktion geprüft werden, so müssen die Vorschriften über die Herstellung 

 bestimmter H-Ionenkonzentrationen beachtet werden. 



Obw'ohl ein „aseptisches'' Vorgehen meist nicht mögUch und auch 

 nicht nötig ist, so empfiehlt es sich doch, die Instrumente auszukochen: 



*) Vgl. den Abschnitt von Franz Müller im dritten Bande dieses Handbuches. 

 S. 321. 



I 



