Die wichtigsten Methoden zur Darstellung von Zellgranulationen etc. 193 



baiim wolle werden in ÖOcm^ Azeton gelöst; b cm^ der Lösung mit 20cw?3 

 Alcoliol. absol. verdünnt. Die mit dieser Flüssigkeit angepinselten Schnitte 

 preßt mau mit Fließpapier unter starkem Drucke an: sie halten dann 

 meist alle Manipulationen des Färbens etc. aus. Da sie dabei aber nicht 

 gestreckt werden, so entsteht die oft gar nicht oder nur unter großem 

 Mühaufwand zu bewältigende Aufgabe, schon beim Schneiden für ein mög- 

 lichst glattes Abkommen der Schnitte vom Messer zu sorgen. Ein Strecken 

 der Schnitte mit Hilfe von warmem Wasser auf mit Eiweißglyzerin über- 

 zogenem Objektträger, wie es Schridde empfohlen hat (1. c. 05, «), ist für 

 lückenlose Serien allerdünnster Schnitte etwas riskant; es reißt zu leicht 

 bei mehrmaligem Übertragen einer oder der andere ein. 



Zur Untersuchung der in so mancher Hinsicht interessanten, an den 

 Granulis sich vollziehenden Fettumsetzungen sind die in AHmmms Geraisch 

 fixierten Präparate ohne weitere Färbung etc. zu brauchen, sei es, daß 

 man die Sekretionsvorgänge an den Hauttalgdrüsen (Anal- und Präputial- 

 drüsen. Bürzeldrüsen) studieren oder die von mir (1. c. 1890) beschriebenen 

 Fetteinlagerungen im Unterhautfettgewebe neugeborener Katzen und Hunde 

 verfolgen will. Die aufgeklebten Schnitte werden so rasch als möglich 

 durch Xylol vom Paraffin befreit, dieses durch Paraff. liquidum verdrängt, 

 der Überschuß des letzteren sorgfältig abgewischt und ein Deckglas darauf 

 gelegt. Umrandet man dieses mit Schellackfirnis, so kann man die Prä- 

 parate beliebig lange unverändert aufbewahren. Der gegenüber Kanada- 

 balsam oder Dammar etwas niedrigere Brechungsindex des Paraff. liquid, 

 vermindert allerdings etwas die ^Möghchkeit, allerfeinste Details zu erkennen, 

 doch wird dieser Nachteil reichlich aufgewogen durch den Vorteil, daß das 

 Paraff. Uquid. auch die empfindlichsten Osmiumschwärzungen — soweit 

 sie nach der Einbettung sich in den Präparaten noch vorfinden — , kon- 

 sei-viert. Allerdings ist dies für Fettsubstanzen in den ersten Stadien der 

 Assimilation, vor allem für Fettlezithingemische nicht der Fall; hier muß 

 man die Untersuchung des Präparats nach dem Auswaschen vornehmen, 

 und zwar entweder an Zupfpräparaten oder an Gefrierschnitten, die man 

 in Glyzerin untersucht. Einige nähere Angaben folgen unten an Hand von 

 Beispielen. 



Färben. 



Für die Färbung der Zelleib- oder Protoplasmagranula kommt 

 als universelle Methode die Alfmannsche Anilin-Säurefuchsin-Pikrinfärbung 

 in Betracht. Die Schnitte werden durch Übergießen des Objektträgers mit 

 Xylol vom Paraffin befreit, das Xylol mittelst OÖ^/oigem Alkohol verdrängt, 

 letzterer rasch so weit abgewischt, daß er nur noch über den Schnitten in 

 dünner Schicht steht und nun über dieses Feld die Farblösung in hoher 

 Schicht übergegossen. Die zur Färbung benützte Anilinwasser-Säurefuchsin- 

 lösung bereitet man wie folgt: 20 ^r Säurefuchsin 1) werden in ] 00 cm'^ 



') Bei der Wahl des Säurefuchsins achte man auf ein „gelbstichiges" Präparat, d. h. 

 ein solches, das beim Zusatz von Alkali (NaOH) zu einer mäßig konzentrierten Lösung 



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