Die Kapillarisation zur Unterstützung mikrochemischer Arbeiten. 253 



lösung war folgendermaßen zusammengesetzt : 100 cm 3 Wasser enthielt 

 05 g Ginkose — 0*5 g Rohrzucker und 1 g Albumin. Von dieser Lösung 

 wurden zweimal 0*1 cm 3 auf A aufgetropft, während auf B ein Tröpfchen 

 Invertinlösung gesetzt wurde. Die Albuminlösung' hat hier nur den Zweck. 

 die kapillare Ausbreitung zu verlangsamen. 



Nach dieser Methode ist der Rohrzucker im Gramineen schildchen 

 nachgewiesen. Siehe die nebenstehende Fig. 52. Auf die Mitte waren 15 mit 

 ein wenig Glas und einigen Tropfen Wasser zerriebene Schildchen von 

 keimender Gerste aufgelegt worden. Aus beiden Feldern ist ersichtlich. 

 daß der Rohrzucker unter dieser Bedingung kaum merklich dem reduzie- 

 renden Zucker voraneilt. A priori wurde erwartet, daß der Unterschied 

 einen größeren Betrag erreichen müßte; denn es war zu bedenken, daß 

 der Zucker in der Form des Rohrzuckers im Gewebe wandert. 



In Versuchen mit anderen Konzentrationen schien mir eher der re- 

 duzierende Zucker (Glukose) die Randzone einzunehmen und der Rohr- 

 zucker ein wenig zurück zu bleiben. 



Der in Fig. 51 dargestellte, aus Cu 2 bestehende Kreis enthielt nach 

 den vorstehenden Angaben O'OOJ g Glykose und 0*001 g Rohrzucker. Ist 

 die Lösung noch verdünnter, dann hat man Ol cm 3 ausfließen und trock- 

 nen zu lassen, worauf noch ein- oder mehrmals diese Operation wieder- 

 holt wird, um auf diese Weise die zu invertierende und zu reduzierende 

 Zuckermenge zu vermehren. Man braucht dann nicht die ganze Flüssig- 

 keit einzudampfen. 



Über den Nachweis von Proteasen. 



Der kapillaranalytische Nachweis der proteolytischen Enzyme ent- 

 spricht dem der Diastasen durch die Jodreaktion, bei welcher man aus 

 dem Ausbleiben der Blaufärbung auf Stärkehydrolyse schließt. Man wird 

 also die der Einwirkung einer Protease ausgesetzten Eiweißstoffe zu färben 

 suchen. Dann zeigt das Ausbleiben der Färbung wie bei der Stärke die 

 hydrolytische Einwirkung an. 



Als günstiges Objekt, um ein Phytotrypsin nachzuweisen, wählen 

 wir die Kotyledonen von Phaseolus, wenn die Keimpflanze eine Länge von 

 etwa 15 cm erreicht hat. Nach Abreiben mit Alkohol, um etwaige Pilze zu ent- 

 fernen, wird der Kotyledo in kleine Stückchen zerschnitten und mit ein 

 wenig Thymol im Mörser zerrieben. 



Das Reagenspapier für den Kapillarisator wird folgendermaßen zubereitet : 



1 y Albumin wird in 50 cm 3 Wasser unter Zusatz von 2 cm 3 Am- 

 moniak gelöst. In dieser Lösung läßt man das kreisförmig ausgeschnittene 

 Filtrierpapier ca. 10 Minuten liegen und legt es dann zum Trocknen über 

 eine Kristallisationsschale, da das Papier auf einer Platte sonst fest an- 

 haften würde. 



Für den gewählten Fall ist es nötig, das getrocknete Albuminpapier 

 einige Zeit (*/* Stunde) den Dämpfen von Eisessig auszusetzen: für Pan- 

 kreastrvpsin ist dies nicht nötig. 



