Stoffwechseleiidprodiikte: Nachweis u. Bcstinini. d. Kiweißahbauprodiiktc etc. 8.')5 



\'(tliiiiii'ii ciiici- Mischuiij; von oineni Voluinen Chloroform und 2 \'olumen 

 Äther schüttelt. Der Ather-('hlorot'orinini.s('hiin<r entzieht man den Farbstoff 

 durch Wa.s.ser besonders leicht, wenn dem Wasser eine Spur Alkali zu- 

 gesetzt wird. 



Der Nachweis des rrobilins eri'olut: 



1. Nach Jaß'e, indem man das Filtrat nach Ammoniakzusatz mit 

 etwa ö Tropfen 10»/„ip:er Chlorzinklösunp; versetzt und auf ii:riine Fluoreszenz 

 wie auf die Absorptionsstreifen. Man macht mit Ammoniak stark alkalisch 

 und fiijit dem Filtrat nur so viel Zinksalzlösuni-' zu, dali kein bleibender 

 Niederschlag entsteht. 



Charakteristisch sind die Absorptionsstreifen auch in sehr verdünnten 

 sauren Lösungen zwischen /> und F, näher dem letzteren liegend. Die 

 Absorptionsstreifen treten manchmal erst nach längerem Stehen des 

 Harns auf. In alkalischen Lösungen ist der Streifen mehr nach h gerückt- 



2. Nach XencJci und Eotschy^) säuert man 10—20 em^ Harn mit 

 einigen Tropfen Salzsäure an und schüttelt dann gelinde mit 5—10 cm^ Amvl- 

 alkohol aus. Die amylalkoholische Lösung wird spektroskopisch untersucht. 

 Eine grüne Fluoreszenz entsteht, wenn man einige Tropfen einer alkoholischen 

 Chlorzinklösung (1 g Chlorzink in 100 cm^ ammoniakalischem Alkohol) zu 

 der amylalkoholischen Lösung hinzufügt. 



;•>. Nach W. Schlesmfjer^) erhält man selbst in urobilinarmen und 

 an sonstigen Farbstoffen reichen Harnen unmittelbar schöne Fluorescenz 

 und deutliche Absorptionsspektren, wenn man sie mit der gleichen Menge 

 einer 10Voij?en Ziukacetatlösung in absolutem Alkohol versetzt und von 

 dem entstehenden Niederschlag klar filtriert. Reine wässerige Urobilin- 

 lösungen geben die Reaktion noch in einer Verdünnung von 0-002Vo- Bei 

 Gegenwart von viel Bilirubin ist die Beseitigung dieses nach Bouma er- 

 forderlich (siehe S. 852j. 



Fäzes werden zum Nachweis des Urobilins zuerst mit Äther entfettet, 

 mit Säure enthaltendem Alkohol extrahiert, die Säure durch Ammoniak 

 abgestumpft und das Reagens von Schlesinger zu gleichen Teilen zugesetzt. 

 Oder man fügt das Reagens zu dem wässerigen Auszug der frischen Fäzes. 



Nach A. Schmidt verreibt man 2 — 3 cm^ große Brocken von frischen 

 Fäzes in einer kleinen Porzellanschale mit wässeriger gesättigter Sublimat- 

 lösung, bringt die Masse in ein Uhrschälchen, läßt bedeckt stehen und 

 prüft am nächsten Tage makroskopisch und mikroskopisch, Grüne Teile 

 zeigen die Gegenwart von Rilirubin an, während urobilinhaltige Bestand- 

 teile sich rot färben. 



Zum Nachweis des Urobilinogens in den Fäzes verreibt man nach 

 Neubauer^) die Fäzes zur Entfernung des Indols und Skatols sorgfältig 



^) M. Noicki und A. Rotschji , Zur Kenntnis des Hämatoporphyrins und des 

 Bilirubins. Monatshefte d. Chcm. Bd. 10. S. 568 (1889). 



-) W. Schlesinger, Deutsche med. Wochenschr. Bd. 29. S. 561 (1903). 



") Vgl. //. ThierfcJder, IIandl)uch. 8. Aufl. S. 740. Neubauer, Sitzl.er. d. Ges. d. 

 Morph, u. Phvs. München. Juli 1903. 



