Die wichtigsten Methoden lieini Arlioitcn mit l'ilzen und Hiikterien. li^dl 



Aiiiylasonaclnvois : Nach diT iiiixanographischen Methode ver- 

 führt iiKin in der Weise, daii man die oben pjenannte Gehitine herstellt 

 und lösliche Stärke in einer Meüge von 05"/o zusetzt. Hierauf beimpft man 

 eine Gelatineprobe bei H^" C mit einer Glukosehefe, z. H. Saccharoniyces 

 apicnlatus, eine zweite mit einer rolysaccharosehefe, z. K. Saccharoniyces 

 acetaethylicus. Nach trleichmäßiiier Verteilung der Ilefenzellen im Substrat 

 gießt man die Platten in A7r/sche Schalen und läßt rasch erstarren. Jetzt 

 bringt man Tröi)fchen des Kulturfiltrates, das auf Aniylase zu untersuchen 

 ist, auf die Platten oder verinipft direkt Mikroorganismen darauf. Im 

 rmkreis desjenigen Tröpfchens, das Amylyse enthält, wird zumindest die 

 Polysaccharosehefe anwachsen, wenn die Spaltung in Dextrin erfolgt ist. 

 Findet eine tiefere Spaltung bis zu (ilukosen statt, dann wird auch in der 

 ersten Platte Wachstum der Glukosehefe eintreten. 



Mit der Diffusionsmethode gelingt der Nachweis ebenfalls leicht, wie 

 auf S. 1251:» angegeben ist. 



Für den Nachweis von Am y läse bei Bakterien, die nur bei Pirut- 

 temperatur gedeihen, ist die Gelatineplatte natürlich nicht zu gebrauchen. 

 Hier suspendiert man nach dem Vorgange von van Senus und Eijkinan^) 

 Stärke in Agarplatten und verimpft darauf Striche oder Punkte mit der 

 zu untersuchenden Bakterienart oder Pilzart. Bei der Produktion von 

 diffundierender Am y läse wird der Nährboden im XTmkreise der ent- 

 stehenden Kolonien dadurch aufgehellt und durchsichtig, weil die Stärke 

 in lösliche Verbindungen aufgespalten wurde. 



Gelasen ach weis nach Gran-): Verwendet wird ein Nähragar, der 

 FöVo Agar, 3"/o Kochsalz, P/o Pepton und 0*1 Vo Monokaliumphosphat ent- 

 hält, eine schwach alkalische Reaktion aufweist und mit Lackmus oder 

 Azolithmin schwach gefärbt wird. Das Nährsubstrat wird verflüssigt und 

 bei 40" C mit Bacillus phosphorescens Beijerinck gleichmäßig be- 

 impft. Hierauf werden Platten gegossen und dieselben nach dem Erstarren 

 auswachsen gelassen. Nach 8 Tagen, nach welcher Zeit die Platten nur 

 kaum mehr leuchten, wird darauf die Bakterienart in Form von Strichen 

 verirapft, die auf die Fähigkeit der Agarhydrolyse untersucht werden soll. 

 Enthält die Bakterienart ein solches Enzym, so entstehen innerhalb kurzer 

 Zeit um die Impfstriche leuchtende Felder. 



Der Nachweis von fettspaltenden Eigenschaften bei Pilzen und 

 Bakterien gelingt leicht nach der Methode von Eijkman (1. c). Danach 

 wird der Boden von Pe^nschen Schalen mit einer dünnen Schicht von P'ett, 

 vornehmlich liindertalg, bedeckt. Darüber wird mit dem noch flüssigen 

 Agar eine Platte gegossen, auf die die zu untersuchenden Bakterien ver- 

 impft werden. In Agar diffundierende Lipasen zersetzen dann den Talg 



*j Eijkman, Über Enzyme bei Bakterien und Schiinniolpilzcn. Zentralbl. f. Bakt. 

 I. Abt. Bd. 29 (1901). 



^) If. II. Gran, Studien über Meeresbakterien. II. tJber die Hydrolyse des Agar- 

 Agars durch ein neues Enzym, die Gelase. Bergens Museum, Aarbog. Heft 1 (1902). 



