Die wichtipstoii Mithodcn beim Arboiteii mit Pilzen iiinl Haktorien. 1267 



Als Indikator für Siiurobostiinniiiniion vcrwcMidet iniiii am 

 besten nach .1. Meli/er^) eine Lösun;,^ von ()')// Kosolsäure in t)0 cni^ 

 Alkohol, die mit dem g:leichen Volumen destillierton Wassers 

 verdünnt wird. 



Der Indikator für die Titricrnni,^ der Hasen ist eine .Viif- 

 lösung von OOf) ^ Dimethylaniidoazobenzol in Kio rm^ Urjö/oigem 

 Alkohol (nach .1. Mii/cr'^). 



Bei Kulturen von siiurehildenden Mikroorganismen bestimmt iiiaii 

 den Titer auf folgende Weise. Man mil.it in ein kleines liechergläschen mit 

 einer genauen Pipette \0 cm^ des verwendeten sterilen Nährsubstrates und 

 in ein gleich großes Becliergläschen 10 cm-'^ destillierten ausgekochten 

 Wassers. In jede Portion kommen je ;^ Tropfen der Rosolsäurelösung 

 (Indikator). Hierauf bestimmt man den Titer der sterilen Nährflüssigkeit 

 durch Zusatz von '/lo Normalnatronlauge bzw. Vio Normal-Schwefelsäure, 

 die man aus einer Bürette zuflielien läßt. Die Vergleichsprobe mit destil- 

 liertem Wasser, der noch 1 Tropfen '/i„ Normalnatronlauge zugesetzt wird, 

 ist, auf einer weißen Porzellanplatte stehend, in der Nähe zu halten. INIan 

 titriert durch entsprechende Zugabe von Alkali soweit, bis das Rot der 

 neutralen Vergleichsprobe erreicht ist. Diese Titrationeu sollen immer bei 

 Tageslicht ausgeführt werden. Nun notiert man den Titer der ursprüng- 

 lichen, zur Kultur verwendeten Nährflüssigkeit, indem man die zur Her- 

 Stellung der Farbengleichheit verwendeten Mengen von Säure und Alkaü 

 voneinander subtrahiert und die Differenz anmerkt. 



Hierauf gießt man die zu untersuchende Kultur in einen Meßkolben 

 von bOcnt^ Inhalt und ersetzt die verdampfte Menge Wasser, indem man 

 mit sehr kleinen Portionen von destilliertem W^asser das Kulturglas aus- 

 spült und bis zur Marke damit auffüllt. Nach Durchmischung der Kultur- 

 flüssigkeit filtriert man durch gehärtetes Filtrierpapier und entnimmt 

 10 cm^ Filtrat , das in ein gleiches kleines Bechergläschen gegeben wird, 

 wie es für die Vergleichsprobe oben genommen wurde. Nunmehr versetzt 

 man die Probe mit H Tropfen Rosolsäurelösung, notiert den Stand von 

 Säure und Alkali in den Büretten und fügt solange Säure und Alkali zu, 

 bis die Farbe der Vergleichsprobe erreicht ist. Die Differenz 

 der zweiten Ablesung ergibt den Säuregrad in 10 cm^ Kultur- 

 flüssigkeit, ausgedrückt in Kubikzentimetern \/io Normalna- 

 tronlauge. Wir bezeichnen sie mit D. Jetzt muß noch der ursprüng- 

 liche Säure- bzw. Alkaligehalt der verwendeten Nährflüssigkeit in Rechnung 

 gesetzt werden. War der Nährboden sauer, mulj diese Säuremenge abge- 

 zogen werden; war er alkaUsch, so ist diese Zahl hinzuzufügen. Wir be- 

 zeichnen sie mit -|- d und — d, entsprechend einem alkalischen oder sauren 

 Nährsubstrat. Hierauf rechnen wir den Säuregehalt noch auf 100 rw^ 

 Kulturflüssigkeit um, indem wir die erhaltene Zahl mit 10 multiplizieren. 

 Demnach ergibt sich nach unserem Verfahren ein wahrer Säuregehalt in 



*) A. Meyer, Praktikum der botanischen Bakterieukunde. Jena. S. 96 u. f. (1903). 



