Tierische Pigmente und Farbstoffe. 745 



mit dem doppelten Volumen einer Ol «^/oigen alkoholischen Zinkacetatlösung 

 überschichtet. An der Berühnmgsstelle beider Flüssigkeiten entsteht ein 

 grüner Ring. Beim Umschütteln tritt grüne Fluoreszenz in der ganzen 

 Mischung auf. (Grün im auffallenden, rot im durchfallenden Licht.) 



Andere Methoden, die keine Vorzüge bieten, sind von Grimhert und 

 Jolles^) angegeben. 



Versagen auch diese Proben, so ist die Isoüerung aus größeren Harn- 

 mengen nach einer der beschriebenen Methoden am Platz. 



Spektroskopische Prüfung. Verdünnte Säurelösungen zeigen einen 

 Absorptionsstreifen zwischen C und F, mehr an F und etwas über F hin- 

 ausgehend. In alkalischer Lösung ist der Streifen weniger stark und mehr 

 nach C gerückt, am schwächsten in ammoniakahscher Lösung. In Anwesen- 

 heit von Chlorzink aber ist der Streifen sehr deuthch. 



Hat man einen bereits isoherten Farbstoff als Urobilin zu identi- 

 fizieren, so ist das spektroskopische Verhalten besonders charakteristisch. 



1. In saurer oder neutraler Lösung in Alkohol oder Chloroform: 

 breiter Streifen zwischen E und F, der, bei starker Konzentration etwas 

 über F hinausreichend, gleichmäßig in die Verdunklung im Violett übergeht. 



•1. Nach Alkahsieren verdünnter Lösungen: Verschwinden des ge- 

 nannten Streifens. Nach Zusatz von Chlorzink Auftreten eines einzigen 

 breiten Streifens ziemlich in der Mitte zwischen E und F, näher dem Rot 

 zu gelegen, ohne Verdunklung in Violett. 



8. In konzentrierten Lösungen: Nach Ansäuern einer konzentrierten 

 Urobihnlösung in schwacher Lauge mit Schwefelsäure zu eben beginnender 

 Trübung entsteht ein neues Band an der Linie E neben dem Spektrum des 

 sauren Urobilins (sub 1). Der Streifen ist mit y durch einen Schatten verbunden. 



Handelt es sich um die Isolierung oder den Nachweis von iTobilin 

 in Fäzes oder anderen Gewebssäften, so ist eine Darstellung des Farb- 

 stoffs durch vorangehende Isoüerung immer zweckmäßig. 



IL Aus Fäzes. Man extrahiert die Fäzes durch Zerreiben mit schwefel- 

 haltigem Alkohol, engt das Extrakt bei 40 — 50" ein und nimmt, ^^ie bei 

 der Isoüerung nach Huppert, in Chloroform auf. Die spektroskopische Probe 

 und Fluoreszenzprüfung entscheidet dann. Tritt keine Fluoreszenz auf, so 

 überzeugt man sich, ob nicht nach Zusatz von 1 Tropfen Jodtinktui- zu 

 IQ cui'^ Alkoholextrakt Urobiünogen in Urobiün übergeht, Steensma.-) 



In anderen Fähen extrahiert man die Fäzes mit verdünnter Schwefel- 

 säure (2 p. m.) und isoliert durch Fällung mit Ammonsulfat nach Garrod(s. o.). 



Ohne Isolierung kann man Urobiün in Fäzes nach Angaben von 

 Schmidt^) feststeUen. In einem kleineu, weißen PorzeUanschälchen verreibt 



^) L. Grimbcrf, Aufsuchiuitj von üroliiliu im Urin. Compt. rend. de la soc. de biol. 

 V. 56. p. 599 (1904). 



2) F.A. Steensma, Über die Untersuchung der Fäzes auf Urobilin. Xederl. Tijdschr. 

 f. Geneesk. I. S. 273 (1907). 



^) Ä. Schmidt, Über Hydrobilirubinbildung im Organismus unter normalen Ver- 

 hältnissen. Verhandl. d. 13. Kongresses f. innere Med. S. 320 (1895). 



