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Anhaufung des Spirillums. 



In eineni Erlenmeyer kolben von 500 ccm bringe ich eine Wasserschicht von 

 2 — 3 cm Dicke, mit einigen Prozent des nur wenig lösUchen Kalziummalats und 0,02 — 

 0,05% K2HPO4. Es wird infiziert mit viel, z.B. 5 — 10% des zu untersuchenden Erd- 

 musters. Diese starke Infektion ist nicht nur notwendig zur Anführung einer genügen- 

 den Anzahl der bezüglichen Keime, sondern auch um Humus und Kieselsaure in die 

 Lösung zu bringen, welche das Wachstum sehr begunstigen. Wenn Erde aus dem La- 

 boratoriumsgarten zu Delft oder den um die Stadt gelegenen Wiesen verwendet wur- 

 de, also ein feuchter Alluvialboden, und bei ca. 30° C. kultiviert wurde, so erhielt ich 

 gewöhnlich am 3. Tage eine stark bewegliche Azotobacterkultur, welche, wie immer, 

 spater die Beweglichkeit verlor, zugleich mit einer schwachen, bald aufhörenden Ga- 

 rung von Clostridium pastorianum, welches sich bei der ziemlich starken Lüftung und 

 der dafür ungünstigen Malaternahrung bald vermindert, um dann ganzlich zu ver- 

 schwinden. Nur beim langeren Stehen dieser Kuituren haufte sich das Spirillum darin 

 etwas an, vorausgesetzt, dass genügend Malat zugegen war. 



Verwendete ich für den Versuch anstatt Gartenerde Schlamm aus dem Stadt- 

 graben oder den Schwemmkanalen zu Delft, so war das Resultat dasselbe, nur be- 

 kam ich dabei abweichende Varietaten von Azotobacter chroococcuni i). 



lm Laboratoriumsgarten hatte ich ein grosses Sandbeet aus Dünensand machen 

 lassen für das Studium der Seradellabakterien, welche Pfianze im Sande sehr gut, in 

 der Delfter Erde aber gar keine Knöllchen tragt. Wenn ich mit diesem Sande den 

 Malat -Azoiobacter-YeTsuch anstellte, fand ich stets am 3. oder 4. Tage neben wenig 

 oder gar keinem Azotobacter eine grosse Menge des sehr eigentümlichen Spirillums. 

 Das Clostridium war nur schwierig zu finden und Garung nicht bemerkbar. 



Impfte ich den Sand in eine Mannitlösung oder in Wasser mit 1 % Glukose, 1 % 

 Rohrzucker, 0,05% K2HPO4 und 2% Kreide, so entwickelte das Spirillum sich eben- 

 falls, doch wurde es verdrangt durch Azotobacter und Clostridium. 



Gegenwartig lebe ich zu Gorssel (bei Zutphen) auf diluvialem Sande, bedeckt 

 mit Kiefernwald und Heide, und Roggen- und Kartoffelfeldern. Mache ich mit diesem 

 Boden den A zotobacter-Y ersuch in Zuckerlösung bei 20° Q so bekomme ich niemals 

 Azotobacter, sondern nur starke Garung und Anhaufung von Clostridium pastorianum, 

 und zwar selbst dann, wenn ich den gut gedüngten und mit Kalk versetzten Roggen- 

 boden verwende. Ofienbar ist der Boden für Azotobacter zu sauer und mit Kalk nicht 

 genügend neutralisiert. 



In der Nachbarschaft strömt der Yselfluss, eine Rheinmündung, welche in den 

 Zuidersee lauft. Verwende ich den Ton des Ufers davon, so entsteht eine Azotobacter 

 kultur wie zu Delft. 



Mit diesem Yselton habe ich 1921 und 1922 meinen auf Diluvialsand gelegenen 

 Garten gedüngt, und wenn ich den Versuch mit diesem gemischten Boden in Zucker- 

 lösung bei 20° C. tue, so erhalte ich entweder allein Clostridium, Clostridium mit 

 Azotobacter oder die beiden letzteren zusammen mit dem Spirillum. Letzteres ent- 

 wickelt sich bei einzelnen Versuchen so allgemein, dass die beiden anderen Arten 



1) Azotobacter agilis, welcher bei Gegenwart von Eisensalzen ein gelbes, bei deren Ab- 

 wesenheit ein tiefrotes Pigment erzeugt, erhielt ich nur in den Zuckerlösungen. Diese Art 

 scheint sehr selten zu sein. 



