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Tetanusbazillen, Gasbrandbazillen, Rauschbrandbazillen, Schweine- 

 rotlauf bazillen, Mäuseseptikämiebazillen, Streptothricheen (Aktino- 

 myces), Kartoffelbazillen, Milchsäurebazillen, Heubazillen, Bac. 

 Megatherium u. a. 



Nach Gram sind nicht färbbar, also gramnegativ: 



Gonokokken, Meningokokken, Micrococcus catarrhalis, Micro- 

 coc'Ais melitensis, Influenzabazillus, Keuchhustenbazillus Bordet- 

 Gongou, Bac. septicaemiae haemorrh., Pestbazillen, Pneumonie- 

 bazillen Friedländer, Typhusbazillen, Paratyphusbazillen, Ente- 

 ritisbazillen, Ruhrbazillen, Kolibazillen, Bac. prodigiosus, Fluore- 

 szens, Rotzbazillus, Choleravibrionen sowie choleraähnliche Vibri- 

 onen u. a. *). 



Methoden der Kapselfärbung: 



Die Bakterienkapsel läßt sich in der Regel nur aus Material dar- 

 stellen, welches dem Tierkörper entnommen ist oder aus Kulturen, die 

 in Körperflüssigkeiten gezüchtet worden sind. Oft erhält man bereits 

 mit der einfachen Färbung mit Löff lers Methylenblau, mit verdünntem 

 Karbolfuchsin oder mit sehr verdünnter Kristallviolettlösung eine deut- 

 liche Differenzierung der Kapsel. Auch bei der Gramschen Färbung 

 färbt sich bei grampositiven Bakterien die Kapsel häufig mit der 

 Kontrastfärbung. Spezielle Methoden sind unter anderem: 



Die Methode von Johne: 



1. Färbung mit 2%iger wässeriger Gentianaviolett- oder Methyl- 

 violettlösung unter Erwärmen 1—2 Minuten. 



2. Abspülen mit Wasser. 



3. Differenzierung in 1- bis 2%iger Essigsäure 5—10 Sekunden. 



4. Wasserspülung. 



5. Untersuchung inWasser (ni cht in Kanadabalsam oder Zedernöl, 

 da darin das Kapselbild fast vollständig verschwindet). 



Diese Färbung ist zur Darstellung der Milzbrandbazillenkapseln 

 angegeben worden. 



Methode von Nicolle: 



1. Färbung in folgender Mischung : gesättigte Lösung von Gentiana- 

 violett in absolutem Alkohol 10,0, l%iger Karbolsäure 100,0. 



2. Abspülen in einer Mischung von 3 Teilen absolutem Alkohol und 

 1 Teil Azeton. 



3. Wasserspülung, Trocknung, Einbettung. 



Methode von Ribbert: 



1. Färbung in folgender Lösung: Wasser 100,0, Alkohol abso- 

 lutus 50,0, Eisessig 12,5, dazu soviel Dahlia als sich in der Wärme löst. 



2. Wasserspülung, Untersuchung im Wasser oder — weniger gute 

 Bilder — Trocknen, Einbettung in Balsam. 



*) Zu erwähnen ist noch die Cyanochinfärbung nach Ph. Eisenberg: 

 drei Teile konzentrierte, wässerige Cyaninlösung werden mit sieben Teilen kon- 

 zentrierter wässeriger Chinablaulösung gemischt. (Das Ganze bei Dr. Grübler & Co., 

 Leipzig, als Cyanochin erhältlich.) Mit dieser Mischung wird ähnlich wie beim 

 Burri sehen Tuscheverfahren Bakterienaufschwemmung vermischt, in dünner 

 Schicht ausgestrichen und trocknen gelassen. Die nach Gram positiven Bak- 

 terien erscheinen nach Eisenberg rosa bis rot, gramnegative Bakterien 

 plasmolytisch differenziert und ungefärbt. 



