Methodik. 373 



20 Minuten sterilisieren. Der Nährboden ist, solange er heiß ist, rosa 

 gefärbt, in erstarrtem Zustande aber fast farblos (Typhus, Paratyphus 

 Ruhr farblos. Coli rot). 



d) Neutralrotagar (Rotberger). Zu 100 ccm flüssigem 0,3%- 

 igem Traubenzuckeragar wird 1 com einer kalt gesättigten wässerigen, 

 im Dampf steriüsierten Neutralrotlösung zugefügt. Der dunkelrote 

 Nährboden wird, in Reagenzgläser hochgefüllt, zu Stichkulturen oder 

 Schüttelkulturen verarbeitet (Bacterium Coli und Paratyphus B-Bazillen 

 erzeugen zunächst Fluoreszenz, dann Entfärbung und Gasbildung, 

 Typhus- und Ruhrbazillen lassen das Neutralrot unverändert). 



e) Lackmus-Nutrose-Traubenzuckerlösung nach Barsie- 

 kow besteht aus Nutrose 1,0, Traubenzucker 1,0, Kochsalz 0,5, destil- 

 liertem Wasser 100,0 und einem Zusatz von Lackmus (Typhusbazillen 

 zersetzen den Traubenzucker unter Säurebildung und verursachen Rot- 

 färbung, Ruhrbazillen lassen den Traubenzucker und die Lackmus- 

 färbung unverändert). 



Statt Traubenzucker können zu diesem Nährboden für andere 

 differentialdiagnostische Zwecke andere Zuckerarten (Milchzucker, 

 Mannit, Maltose, Saccharose u. a.) zugesetzt werden. "Wichtig ist die 

 Verwendung chemisch reiner Zuckerarten. 



f) Malachitgrün-Safranin-Reinblau-Agar nach Löffler. 

 Zu 1 1 3%igem neutralen Nähragar kommen 5 ccm Normalnatronlauge 

 und nach dem Sterilisieren 100 ccm einer 10%igen Nutroselösung hinzu. 

 Diese Agarmischung wird in Jenenser Flaschen sterilisiert und durch Ab- 

 setzen geklärt. Vor dem Gebrauch kommen zu 100 ccm aufgelöstem 

 und auf 45° abgekühltem Agar 3 ccm steriliserte und filtrierte Rinder- 

 galle, 1 ccm einer 0,2%igen sterilen, wässerigen Lösung von Safranin 

 rein (Grübler, Leipzig), 3 ccm einer l%igen sterilen wässerigen Lösung 

 von Reinblau doppelt konzentriert (Höchst) und 3—4 ccm einer 0,2%- 

 igen wässerigen Lösung von Malachitgrün, kristallisiert chemisch rein 

 (Höchst), in Petrischalen zu je 10 ccm Agar ausgießen. 



g) Modifikation des vorigen Verfahrens nach Lentz und Tietz. 

 Der Nährboden wird wie der vorige hergestellt, aber ohne Safranin und 

 Reinblau. Auf 100 ccm des flüssigen Nutroseagar kommt 3 ccm Rinder- 

 galle und 1,0 ccm einer 0,2%igen Malachitgrünlösung. Auf den aus diesen 

 Nährböden gegossenen Platten erfolgt innerhalb von 24 Stunden im 

 Brutschrank eine Anreicherung. Die gewachsenen Kolonien werden mit 

 100 ccm physiologischer Kochsalzlösung abgeschwemmt, hiervon werden 

 Drigalski-Platten angelegt, 



h) Conradi verwendet Gallenröhrchen zur Züchtung von 

 Typhusbazillen aus dem Blut: 0,5ccm Blut des Typhusverdächtigen 

 wird in 1 ccm Rindergalle, welche mit 10% Pepton und 10% Glyzerin 

 versetzt ist, aufgefangen. Hiervon werden nach 24 Stunden Drigalski- 

 oder Endo -Platten angelegt. 



Modifikation dieses Verfahrens wird von Kayser, Fornet, 

 Kirschstein u. a. angegeben. Am meisten verwendet wird die Modifi- 

 kation von Kayser, welcher 2,5 ccm Patientenblut mit 5,0 ccm bei 

 110" steriUsierter Rindergalle mischt. 



2. Spezialnährböden zur Züchtung von Choleravibrionen. 



a) Peptonwasser zur Anreicherung. 1,0 Pepton, 0,5 Kochsalz, 



100,0 destilMertes Wasser; aus der Vorratslösung: 10,0 Pepton, 5,0 Koch- 



