Stoffwechselendprodiikte: Nachweis u. Bestimm, d. Eiweißabbauprodukto etc. gö5 



Volumen einer Mischung- von einem Volumen Chloroform und 2 \'oliimen 

 Äther schüttelt. Der Äther-Chloroformmischung entzieht man den Far])stoff 

 durch Wasser besonders leicht, wenn dem Wasser eine Spur Alkali zu- 

 gesetzt wird. 



Der Nachweis des Urobilins erfolgt: 



1. Nach Jaffe, indem man das Filtrat nach Ammoniakzusatz mit 

 etwa 5 Tropfen lOVoiger Chlorzinklösung versetzt und auf grüne P'luoreszenz 

 wie auf die Absorptionsstreifen. Man macht mit Ammoniak stark alkalisch 

 und fügt dem Filtrat nur so viel Zinksalzlösung zu, daß kein bleibender 

 Niederschlag entsteht. 



Charakteristisch sind die Absorptionsstreifen auch in sehr verdünnten 

 sauren Lösungen zwischen h und F, näher dem letzteren liegend. Die 

 Absorptionsstreifen treten manchmal erst nach längerem Stehen des 

 Harns auf. In alkalischen Lösungen ist der Streifen mehr nach h gerückt. 



2. Nach Nencki und Rotschy^) säuert man 10 — 20 cm^ Harn mit 

 einigen Tropfen Salzsäure an und schüttelt dann gelinde mit 5 — 10 cm^ Amyl- 

 alkohol aus. Die amylalkohoHsche Lösung wird spektroskopisch untersucht. 

 Eine grüne Fluoreszenz entsteht, wenn man einige Tropfen einer alkoholisclien 

 Chlorzinklösung (1 g Chlorzink in 100 cm- ammoniakahschem Alkohol) zu 

 der amylalkoholischen Lösung hinzufügt. 



3. Nach W. Schlesinger^) erhält man selbst in urobilinarmen und 

 an sonstigen Farbstoffen reichen Harnen unmittelbar schöne Fhiorescenz 

 und deutliche Absorptionsspektren, wenn man sie mit der gleichen ^lenge 

 ■einer lOVoigen Zinkacetatlösung in absolutem Alkohol versetzt und von 

 dem entstehenden Niederschlag klar filtriert. Reine wässerige Urobilin- 

 lösungen geben die Reaktion noch in einer Verdünnung von 0"002'Vo- l**-^! 

 Gegenwart von viel Bilirubin ist die Beseitigung dieses nach Bouma er- 

 forderlich (siehe S. 852). 



Fäzes werden zum Nachweis des Urobilins zuerst mit Äther entfettet, 

 mit Säure enthaltendem Alkohol extrahiert, die Säure durch Ammoniak 

 abgestumpft und das Reagens von Schlesinger zu gleichen Teilen zugesetzt. 

 Oder man fügt das Reagens zu dem wässerigen Auszug der frischen Fäzes. 



Nach A. Schiinclf verreibt man 2 — 3 cm^ große Brocken von frischen 

 Fäzes in einer kleinen Porzellanschale mit wässeriger gesättigter Sublimat- 

 lösung, bringt die Masse in ein Uhrschälchen, läßt bedeckt stehen und 

 prüft am nächsten Tage makroskopisch und mikroskopisch. Grüne Teile 

 zeigen die Gegenwart von Bilirubin an, während urobilinhaltige Bestand- 

 teile sich rot färben. 



Zum Nachweis des Urobilinogens in den Fäzes verreibt man nach 

 Neubauer^) die Fäzes zur Entfernung des Indols und Skatols sorgfältig 



^) M. Nencki und Ä. Rotschy , Zur Kenntnis des Hämatoporphyrins und des 

 Bilirubins. Monatshefte d. Chem. Bd. 10. S. 568 (1889). 



=) W. Schlesinger, Deutsche med. Wochenschr. Bd. 29. S. 561 (1903). 



3) Vgl. H. Thierfelder, Handbuch. 8. Aufl. S. 740. Neubauer, Sitzbcr. d. Ges. d. 

 Morph, u. Phys. München. Juli 1903. 



