Die wichtigsten Methoden der künstlichen Parthenogenese. um 



Es ist nötig, daß man alle 3 oder 5 Minuten eine Portion Eier in eine 

 besondere Schale mit normalem Seewasser ühertriifrt. Trifft man die Dauer 

 der Exposition nicht genau, so erhält man schlechte Resultate. «) Hei' zu 

 kurzer Exposition entwickeln sich die Eier nicht und Ix-i zu lauger Expo- 

 sition erhält man verkrüppelte Larven. Da die hypertonische Eösuug wesent- 

 lich durch ihren Einfluß auf die Oxydationen wirkt, so ist es nötig,"dal.J das 

 hypertonische Seewasser genügende Mengen freien Sauerstoffs enthalt ^j, 

 und daß nur relativ wenige Eier in ein Gefäß mit hypertonischem See- 

 wasser kommen. Die Eier müssen in einer dünnen Schicht am I'.odeii des 

 Gefäßes liegen, damit sie sich den Sauerstoff nicht .gegenseitig streitig 

 machen. Es ist ferner nötig, darauf zu achten, dal', die 'i'eini)eratnr der 

 hypertonischen Lösung nicht zu hoch ist. 3) FürStrongyloceiitrotus pni-puratus 

 muß die Temperatur unter 20" hegen. Für andere Formen sind die absoluten 

 Zahlen etwas verschieden, nicht nur für die Temperatur, sondern auch in 

 bezug auf die Zeit, während welcher die Eier in der hypertonischen Lösung 

 bleiben müssen. 



2. Variationen dieser Methode. 



Anstatt die Membranbilduug beim unbefruchteten Seeigelei durch eine 

 einbasische Fettsäure hervorzurufen, kann man sie mit irgend einem der 

 bekannten cytolytischen Medien bewirken, z. B. durch Saponin. Löst man 

 eine Spur Saponin in Seewasser auf und bringt man die Eier in dieses 

 Seewasser, so bilden dieselben in wenigen Minuten eine prachtvolle Ue- 

 fruchtungsmembran. Sobald das geschieht, müssen die Eier sofort in normales 

 Seewasser gebracht werden und durch \ier- bis sechsmaliges Waschen in 

 frischem Seewasser müssen sie sorgfältig von der letzten Spur des giftigen 

 Saponins befreit werden. Dann behandelt man die Eier wie vorhin mit 

 hypertonischem Seewasser. Bleiben sie zu lange in der Saponinlösung, so 

 tritt Cytolyse der Eier ein. Auch bei ungenügendem Auswaschen der Eier 

 nach der Membranbildung leiden sie.*) 



Auch artfremdes Blut kann zur Hervorruf ung der Membranbildung 

 beim Seeigelei verwendet werden, z. B. das Blut von Warnd>lütern oder 

 von Gephyreen. ^) Die Membranbilduug gelingt aber in diesem Falle nur 



*) Loeb, tFber den Unterschied zwischen isosmotischen und isotonischen Lösungen 

 bei der künstlichen Parthenogenese. Biochem. Zeitschr. Bd. 11. S. 144 (1908). 



^) Loeb, Über den chemischen Charakter des Befruchtuugsvorgangs. Biochem. 

 Zeitschr. Bd. 1. S. 183 (1906). Derselbe, Weitere Versuche über die Notwendigkeit von 

 freiem Sauerstoff für die entwicklungserregeude Wirkung hypertonischer Losungen. 

 PßüffersArcluY. Bd. 108. S. 30. (1907). 



ä) Loeb, Untersuchungen über künstliche Parthenogenese. Leipzig 1006. S. 49. 



*) Loeb, Über die Hervorrufung der Membranbilduug und Eiitwickbing beim See- 

 igelei durch das Blutserum von Kaninchen und durch cytolytische Stoffe. J'jlil(/ers Archiv. 

 Bd. 122. S. 196 (1908). 



^) Loeb, Weitere Versuche über die Entwickluugserregung des Seeigcleis durch 

 das Blutserum von Säugetieren. Fßügers Archiv. Bd. 124. S. 37 (1908). 



