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+ 1 cm^ einer VsVoi&^n Lösung von Phenolphtalein in öO^oi^em Alkohol; 

 die Mischung wird mittelst Baryt- oder Natronlauge genau neutralisiert) 

 oder ]5cwj3 einer Thymolphtalein-Formolmischung (25 crn^ Alkohol + 50 cm^ 

 Handelsformol + 5 cm^ einer i/oVooigC'n alkoholischen Thymolphtaleinlösung: 

 die ^lischung wird genau neutralisiert) gefügt. Dann versetzt man die 

 Flüssigkeit mit -/r, normaler Ätzbarytlösimg unter Umschütteln bis zur Rot- 

 färbung bei Phenolphtaleinanwendung, bis zur deutlichen blauen Farbe bei 

 Gebrauch von Thymolphtalein, fügt nachträglich noch einen bekannten Über- 

 schuß der 1/5 normalen Ätzbarytlösung hinzu und titriert schließlich mit 

 1/5 normaler Salzsäure zurück. Die Titrierungen erfolgen bis zum Erhalten 

 derselben Farbe wie in einer Kontrollflüssigkeit, welche 20 oit^ destillierten 

 Wassers statt der untersuchten Verdauungsflüssigkeit enthält. Die bei der 

 Titrierung der Kontrolllösung etwa verbrauchte Menge der V5 normalen 

 Ätzbarytlösung wird von der zum Neutralisieren der \'erdauungsflüssigkeit 

 nötigen abgezogen. Die den Yerdauungsflüssigkeiten im voraus zugesetzten 

 Salzsäure- oder Alkalimengen müssen selbstverständlich bei der Berechnung 

 der Analyse in Betracht gezogen werden. 



Falls keine Karbonate oder Phosphate in dem Verdauungsgemische 

 vorhanden sind, so kann man es ebensogut mittelst Vm normaler Natron- 

 lauge als mittelst Ätzbaryt titrieren. Die Natronlauge ist der Barythisung 

 bei der Titrierung von phenylalaninreichen Mischungen vorzuziehen. Bei 

 der Titrierung gewisser Proteine und ihrer ersten Spaltungsprodukte soll 

 man die Vio normale Natronlauge statt der 1/5 normalen Ätzbarytlösung 

 verwenden, um die Ausfällung schwer löslicher Barytverbindungen, besonders 

 beim Gebrauche von Thymolphtalein, zu umgehen. 



Das Prolin = a-Pyrrolidinkarbonsäure braucht bei der Phenolphtalein- 

 titrierung nur 807o und bei der Thymolphtaleintitrierung nur 92 Vo der 

 berechneten Barytmenge. Der dadurch bewirkte Fehler ist ohne Bedeutung, 

 wenn das Proün, wie in den meisten Fällen, nur einen kleinen Bruchteil 

 der gesamten Aminosäuremenge ausmacht ; ist es hingegen in reichlicherer 

 Menge vorhanden, so kann man die Formoltitrierung nicht anwenden. 



Bei der Titrierung mit Natronlauge und Phenolphtalein verbraucht 

 Tyrosin 105-5''/o der berechneten Natronlauge, bei der Thymolphtalein- 

 titrierung 137"5Vo. Bei Anwesenheit größerer T}T0sinmengen ist demnach 

 die Methode unbrauchbar. Beim Vorhandensein kleiner Mengen darf mau 

 die Titrierung nur mit Natronlauge und Phenolphtalein vornehmen. Auch 

 bei der Formoltitrierung der bei einer gewöhnlichen Proteinspaltung ent- 

 standenen Mischung von Aminosäuren kann das anwesende T}Tosin einen 

 Fehler verursachen. Derselbe ist aber gewöhnlich nur klein und geht über- 

 dies nach Sörensen in entgegengesetzter Pachtung von der der übrigen 

 Fehlerquellen der Methode. Da Sörensen zufolge freie Phenolgruppen während 

 der Proteolyse wahrscheinlich nicht gebildet werden, ist dieser Fehler voraus- 

 sichtlich von ungefähr derselben Bedeutung vor und nach der Proteolyse. 

 Wie dem auch sei, der Umschlag ist bei Tyrosinanweseuheit weniger scharf 

 als sonst. 



