Biochemische Methoden bei Malariauntersuchungeii. 199 



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Xatriiimkarbonatlösung auf 10 cm^ Wasser) 10 Tropfen Farbstainmlösung 

 unter gelindem Umherschwenken hinzusetzen und diese Mischung 

 „unverzüglich-' auf die Objektträger heraufgießen, bis die Schicht 

 ganz vom Farbgemisch bedeckt ist. 5. Farblösung mindestens 15 -30 Mi- 

 nuten oder beUebig länger einwirken lassen. 6. (ianz kurzes Abwaschen 

 der Präparate mit sehr dünnem aber scharfem Strahl der Wasserleitung, 

 abtupfen mit FHeüpapier, lufttrocken werden lassen und in Zedernöl oder 

 flüssiges Paraffin einbetten. 



über Schnellfärbemethoden, das sogenannte Dicktropfenverfahren mit 

 Hilfe der erwähnten F'arbstammlösung, über Mansonfärbung usw. siehe bei 

 Giemsu. ^) 



c) Vitalfärbung. 



Vitalfärbungen sind von Srhaiidinn (1. c.) und v. Prowazek mit Methylen- 

 blau und Neutralrot ausgeführt worden. Da die Kerne des lebenden Para- 

 siten das Methylenblau zum Leukofarbstoff reduzieren und sich erst nach 

 dem Absterben infolge Reoxydation des Farbstoffes blau färben, kann die 

 Anwendung von Methylenblau bei der Feststellung des erfolgten Todes der 

 Parasiten wertvolle Dienste leisten. 



Verhalten von Malariablut beim Zentrifugieren. 



Sereni^) erzielte beim Zentrifugieren mit Malariablut ein Anreichern 

 der parasitenhaltigen Erythrozyten in bestimmten Schichten des Zentri- 

 fugates. Er machte die Beobachtung, daß Blutkörperchen, welche Malaria- 

 plasmodien, gleichgültig welcher Art und welchen Alters enthalten, spezi- 

 fisch schwerer, und nur die von Tropikagameten befallenen leichter sind 

 als normale. Durch Zentrifugieren lassen sich daher erstere am reichlich- 

 sten in der äußersten, die Tropikahalbmonde in der dem Serum zunächst 

 folgenden Schicht auffinden, eine Methode, die bei sehr spärlich vorhan- 

 denen Parasiten diagnostisch gut verwertbar erscheint. 



Erkennen latenter Malaria. 



Sehr schwierig gestaltet sich bisweilen das Feststellen einer Malaria, 

 bei welcher Parasiten im peripheren Blute nicht gefunden werden, dagegen 

 in den inneren Organen zu vermuten sind, wie dies z.B. nach ungenügender 

 Therapie häufig der Fall ist. Ziemann (1. c.) zieht hierfür folgende Beweis- 

 möglichkeiten in Betracht. 



a) Punktion der Milz, in welcher bei latenter Malaria Parasiten in der 

 Piegel zu erwarten sind (gefährhch, namentlich bei sogenannten Blutern). 



h) Vorhandensein ,. pigmentierter" mononukleärer Leukozyten (welche 

 für latente Malaria sprechen sollen), eventuell unter Hinzuziehung des Mikro- 

 Polarisationsapparates (siehe bei Pigment). 



') Giemsa, Fixierung und Fäibuiig der Protozoen. Aus Handbuch der pathog. 

 Protozoen, herausg. von S.V.Prowazek. Leipzig 1911. Bd. 1 (zugleich enthaltend Hin- 

 weis auf frühere Arbeiten über die Romanowsky-Färbung.) 



-) Sereni, Nachweis der Malariaplasmodien. II Policlinico. 1908. Vol. 14. H. 10. 



