Syphilis und Framboesie. 867 



höchstens 3 mm dicke Scheiben werden zanächst Ober Nacht in 95proz. Alkohol 

 gelegt; am folgenden Morgen kommen sie in destilliertes Wasser, das mehrmals 

 gewechselt wird, bis sie zu Boden sinken (10 — 15 Minuten). Dann werden sie in 

 eine 100 ccm fassende, weithalsige. dunkle Flasche mit Glasstöpsel gebracht, die 

 15 — 3'Oproz. Silbernitratlösung enthält, und hierin im Brutschrank bei 35—37" C 

 3 — 5 Tage belassen. Hierauf wird nach Abgießen der Argentumlösung die am besten 

 jedesmal frisch bereitete Reduktionslösung (Pyrogallol 40. Formalin 5 ccm, Aq. dest. 

 1000) über die in derselben Flasche bleibenden Stückchen gegossen, um bei Zimmer- 

 temperatur in 24 — 48 Stunden die Reduktion zu vollenden. Manche Autoren emp- 

 fehlen, sowohl die Argentumlösung als auch die Reduktionsmischung täglich zu 

 wechseln. Nach Vollendung der Reduktion wird kurze Zeit mit destilliertem Wasser 

 gewaschen , dann in Alkohol Ton steigender Konzentration entwässert und in Paraffin 

 eingebettet. — Xoch bessere Resultate gibt die Argentum-Pj-ridin-Methode nach 

 Levaditi und Manoitelian. Hier kommen die Organscheiben, die in gleicher Weise, 

 wie eben beschrieben, fixiert und gehärtet wurden, in eine jedesmal frisch zu be- 

 reitende Miscliung von 90ccm 1 — l'5proz. Silbemitratlösung und 10c<rm reinstem 

 P\Tidin. In dieser Mischung werden sie in einer dunklen , mit Glasstopfen gut ver- 

 schlossenen Flasche 2 — 3 Stunden bei Zimmertemperatur und dann noch weitere 

 3 — 5 Stunden im Paraffinschrank bei 45— 50'C gehalten. Dann wird d'ese Lösung 

 abgegossen und, ohne vorherige Abspülung der Präparate mit Wasser, durch die 

 Reduktionslösung ersetzt. Letztere ist stets unmittelbar vor dem Gebrauch herzu- 

 stellen durch Mischung von 90 ccm einer 4proz. PjTOgalloUösung mit 10 ccm reinen 

 Azetons und Zugabe von 15 ccm Pyridin zu 85 ccm der Mischung. Sie muß bei 

 Zimmertemperatur etwa 12 Stunden einwirken. Darauf Abspülung mit Wasser. 

 Härtung in steigendem Alkohol und Paraffineinbettung. Es empfiehlt sich, die 

 Schnitte, die etwa 5— 8jt dick sein sollen, mit ünnablau oder Toluidinblau nach- 

 zufärben und dann mit Ätherglyzerinmischung nach Unna zu differenzieren. Eine 

 derartige Xachbehandlung ist aber nicht unbedingt notwendig. 



Die Spiröchaeta pallida zeigt in Alisstrichpräparaten eine gewisse ^y^ifj^ 

 Beziehung zu den Blutkörperchem sie wird sehr oft diesen an- oder 

 aufliegend gefunden. Nach Schaudinn kann sie auch in die Zellen des 

 kranken Gewebes eindringen und demnach als Zellschmarotzer auf- 

 treten. Auch in die Ganglienzellen des Gehirns und wahrscheinlich auch 

 in Zellen der verschiedensten Organe dringt die Spirochäte ein, wie an 

 Schnittpräparaten nachgewiesen ist. 



Die Spiröchaeta pallida vermag bakteriendichte Tonfilter nicht zu 

 passieren. Es stimmt diese Tatsache sehr wohl mit den Erfahrungen von 

 KlingmüUery Baermann, ühlenhuth und Mulzer u. a. überein, die fest- 

 stellten, dais Filtrate von Aufschwemmungen syphilitischer Gewebe im 

 Tierversuch unwirksam sind. 



Die Zachtang der Spiröchaeta pallida auf künstlichen Xährmedien 

 ist zuerst Schereschewsky geglückt, der allerdings zunächst Mischkulturen 

 von Spirochäten und Bakterien in halberstarrtem Pferdeserum erhielt. 

 Reinkulturen gewann als erster Mahlens und züchtete sie weiter. Xoguchi 

 und nach ihm W. H. Hoffmann, Grouven und Sowade, Ärnheim erzielten 

 durch Verimpfung von Reinkulturen der Spiröchaeta pallida bei Kaninchen 

 syphilitische Veränderungen. Diese Befunde sind später von F. Levaditi, 

 Boas, Tamaszewski u. a. bestätigt und durch weitere Versuche ergänzt 

 worden. 



Für die Züchtung, sind verschiedene Nährböden angegeben worden. Schere- 

 schewsky brachte spirochätenhaltige Gewebsstückchen in halb erstarrtes Pferdeserum, 

 ließ es erstarren und bewahrte die damit beschickten Röhrchen bei 37' C auf. Nach 

 5— 12- Tagen läßt sich in dem teilweise durch die Begleitbakterien verflüssigten 

 Nährboden eine Vermehrung der Spirochäten nachweisen. Nogttchi brachte Gewebs- 

 stückchen in einen Aszitesagar von schwach alkalischer Reaktion (2 Teile 2proz. 

 Agar auf 1 Teil Aszitesflüssigkeit), dem ein Stück frischen Kaninchenhodens oder 

 Niere zugesetzt ist. Der Agar wird in hoher Schicht in Reagenzgläser gefüllt, mit 

 dem zerkleinerten Gewebsmaterial beschickt und mit Paraffin überschichtet. Andere 



