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dem Eindampfen der Flüssigkeit das Chlorammonium durch Alkohol ausgelaugt wird. In 

 krystaUinischem Zustande^) erhält man es, wenn man die Umsetzung mit Ammoniak bei 

 37 ° vor sich gehen läßt imd nach dem Eindampfen das Chlorammonium mit Baryt und SUber- 

 aulfat entfernt und das gelöste Silber mit Salzsäure fällt. Der nach dem Eindampfen zurück- 

 bleibende Sirup läßt sich dann aus Wasser ev. unter Zusatz von Alkohol umkrystaUisieren. 

 Bequemer ist es, das Chlorammonium mit Silberacetat zu entfernen i) und das gelöste Silber 

 mit Ammoniumchlorid zu fällen. Das in Alkohol leicht lösliche Ammoniumacetat bleibt dann 

 beim ümkrystallisieren in der wässerig-alkalischen Mutterlauge. Glycyl-1-tyrosin ist unter 

 den Spaltprodukten gefimden worden, welche bei der partiellen Hydrolyse der Seide entstehen 2). 

 Physiologische Eigenschaften: Durch Pankreassaft, der mittels Darmsaft aktiviert ist, 

 wird das Glycyl-1-tyrosin sehr energisch gespalten 3), während Magensaft ohne Einfluß ist*). 

 Ebenso wirkungslos ist Duodenal- und Pylorussaft, und zwar sowohl bei neutraler, saurer und 

 alkalischer Reaktion*). Darmsaft aus einer isolierten Schlinge des Jejunums spaltet jedoch 

 recht stark 5). Die Wirkung von aktivem Pankreassaft wird bereits bei einem Gehalt von 0,05% 

 Salzsäure gehemmt und ist bei einem Salzsäuregehalt von 0,2 — 0,25^o aufgehoben*). Die 

 Wirkimg von Pankreassaft + Darmsaft auf das Glycyl-1-tyrosin wird bereits bei Gegenwart 

 von 1 Mol. Na(OH) (auf das Dipeptid berechnet) deutlich gehemmt und ist bei 2 Mol. voll- 

 kommen aufgehoben, kann aber durch erhebliche Vermehrung der Fermentmenge wieder 

 deutlich werden 6). Zusatz von GlykokoU, d- Alanin und d, 1- Alanin verzögern die Wirkung 

 des Pankreassaftes. Die hemmende Wirkung der Aminsäuren ist auch noch bei 45° deutlich 

 bemerkbar, während Pankreassaft ohne Zusatz von Aminosäuren zwischen 45 und 50° das 

 Optimum seiner Wirkung zeigt 7). Nach Fetteingabe tritt Darminhalt und damit auch pepto- 

 lytische Fermente in den Magen über. Sie werden normalerweise durch die Salzsäure^^des 

 Magens sehr leicht zerstört resp. in ihrer Wirkung vollständig gehemmt. Wird der nach Fett- 

 eingabe aus einer Magenfistel erhaltene Magensaft sofort durch Alkalicarbonat neutralisiert, 

 so hydrolysiert derselbe Glycyl-l-tyrosin» ). Recht erheblich ist die Hydrolyse, welche infolge 

 von Pankreatin (Rhenania) beobachtet wird^), wogegen ein Pepsinsalzsäuregemisch wirkungs- 

 los ist*). Das Ferment des Pankreatins geht nach dem Verfüttern desselben beim Hunde 

 z. T. in den Urin über^"). Im Gegensatz dazu spaltet der Urin nach Verfütterung von Pankreon 

 (Rhenania) Glycyl-l-tyrosin nichts''). Blutkörperchen vom Pferd spalten das Glycyl-l-tyrosin 

 recht erheblich 11), auch wenn sie durch Filtration mittels Filz oder einer längeren Watte- 

 schicht sorgfältig von Blutplättchen und Leukocyten befreit sind 1 2). Das in den roten Blut- 

 körperchen enthaltene Ferment ist recht empfindlich. Werden die roten Blutkörperchen 

 nicht sofort verarbeitet, sondern mehrere Tage aufbewahrt oder älteres Blut zu ihrer Dar- 

 .steUimg verwendet, so zeigt sich eine deutliche Abschwächxmg der Fermentwirkung i*). 

 Plasma und Serum begünstigen die Ferment Wirkung 12), obwohl beiden das Glycyl-l- 

 tyrosin spaltende Ferment fehlt i). Auch die Blutplättchen enthalten peptolytische 

 Fermente 12), sie spalten Glycyl-l-tyrosin außerordentlich rasch und in sehr großem Um- 

 fange. Kleine Mengen von Blutplättchen greifen das Glycyl-l-tyrosin viel intensiver und 

 rascher an als viel größere Mengen von roten Blutkörperchen. Das den Blutplättchen 

 eigene Ferment wird sehr leicht durch 0,9proz. Kochsalzlösung alteriert. Wäscht man sie 

 mit 0,9proz. Kochsalzlösimg, so verlieren sie sehr bald ihre Fähigkeit, Glycyl-l-tyrosin zu 

 spalten. Plasma, auch erhitztes, scheint auch hier den Fermentprozeß zu begünstigen i). 

 In Übereinstimmung hiermit stehen die Resultate, welche mit den Elementen des Rinder- 

 blutes i3) erhalten worden sind. Das Glycyl-l-tyrosin wird durch die roten Blutkörperchen 



1) E. Abderhalden u- B. Oppler, Zeitschr. f. physiol. Chemie 53, 294 [1907]. 



2) E. Abderhalden, Zeitschr. f. physioL Chemie 63, 315 [1909]. 



3) E. Fischer u. E. Abderhalden. Zeitschr. f. physiol. Chemie 4«, 52 [1905]. 

 *) E. Abderhalden u. P. Rena, Zeitschr. f. physioL Chemie 4T, 359 [1906]. 



ß) E. Abderhalden u. Y. Teruuchi, Zeitschr. f. physiol. Chemie 49, 1 [1906].' 

 8) E. Abderhalden u. A. H. Kölker, Zeitschr. f. physiol. Chemie 54, 363 [1908]. 

 ') E. Abderhalden, G. Cämmerer u. L. Pinkussohn, Zeitschr. f. physiol. Chemie »9, 

 293 [1909]. 



8) E. Abderhalden u. F. Medigreceanu, Zeitschr. f. physiol. Chemie 5T, 317 [1908]. 

 ») E. Fischer u. P. Bergell, Berichte d. Deutsch, ehem. Gesellschaft 3T, 3103 [1904]. 



10) E. Abderhalden u. P. Rona, Zeitschr. f. physiol. Chemie 53, 308 [1907]. 



11) E. Abderhalden u. H. Deetjen, Zeitschr. f. physioL Chemie 51, 334 [1907]. 



12) E. Abderhalden, u. H. Deetjen, Zeitschr. f. physioL Chemie 53, 280 [1907]. 



18) E. Abderhalden u. W. H. Manwaring, Zeitschr. f. physiol. Chemie 55, 377 [1908]. 



