Aliphatische Aminosäuren. 625 



Bei der IsoUerung und Bestimmung des Arginins aus Eiweißspaltprodukten wird man 

 dieses stets vom His tidin zu trennen haben. Arginin imd Histidin kann man von den übrigen 

 Verbindimgen durch Fällen mit Sübemitrat und Baryt abscheiden, doch wird man in der 

 Regel und namentlich stets bei quantitativen Bestimmungen erst alle Hexonbasen mittels 

 Phosphorwolframsäure fällen und aus dieser Fällimg Histidin und Arginin als Silberverbin- 

 dimgen vom Lysin trennen. 



Die Trennung des Histidins vom Arginin geschieht nach der ursprünghch von Kossei 

 und Kutscher angegebenen Weise, die dann von Kossei mit Patten, Pringle und Weiß 

 (1. c.) modifiziert imd ausgestaltet wurde. Die Methode beruht darauf, daß bei der Fällung 

 der beiden Hexonbasen mit Silbemitrat und Baryt erst das Histidin ausfällt, bei Zusatz eines 

 Überschusses an Baryt dann das Arginin. Die Trennung kann dadurch sehr genau gemacht 

 werden, daß man das Histidin, solange es nicht vollständig ausgefällt ist, im Filtrate mittels 

 ammoniakalischen Sübemitrats (Entstehung eines unlöslichen Niederschlags) nachweisen 

 kann. An Stelle des Sübemitrats benutzt man bei genauen Bestimmungen feingepulvertes 

 Silbersulfat, das in die erwärmte Lösutng eingetragen wird, statt des Bariumhydrats mit Vor- 

 teil Bariumcarbonat. Die Histidinabscheidung ist dann so vollständig, daß man im Filtrat 

 das Histidin mit der sehr empfindlichen Diazobenzolsulfosäurereaktioni) nicht mehr nach- 

 weisen kann. 



In der ursprünglichen Vorschrift von Kossei 2) wurde aus dem Gremisch der Hexon- 

 basen zuerst das Histidin mit wässeriger Quecksilberchloridlösung ausgefällt, dann das Arginin 

 mit Silber und Baryt. Mittels Quecksilbersulfat läßt sich Histidin quantitativ von Arginin 

 trennen. 



Über die Details bei der Isolierung und der quantitativen Bestimmung des Arginins 

 nach dem jetzt gebräuchlichsten Verfahren siehe Weiß 3). Nach der Zersetzung des Ai^'nin - 

 silbemiederschlags mit Schwefelwasserstoff in schwefelsaurer Lösimg wird vom Schwefelsilber 

 abfiltriert xmd gut ausgewaschen, vom Schwefelwasserstoff durch Eindampfen befreit und 

 in einem aliquoten Teil der Stickstoff nach Kjeldahl bestimmt. Aus dem gefundenen 

 Stickstoff wird das Arginin berechnet. Der Rest der Lösxmg wird mittels Bariumhydroxyds 

 von der Schwefelsäure, mittels Kohlensäure hierauf vom überschüssigen Baryt befreit, stark 

 eingeengt, von den letzten Spuren des Baryts eventuell mit einem Tropfen verdünnter Schwefel- 

 säure befreit imd schließlich auf 10 ccm gebracht. Sodann wird mit der berechneten Menge 

 in wenig heißem Alkohol gelöster Pikrolonsäure gefäUt (Steudel). Die abgeschiedenen schwefel- 

 gelben Nadeln werden nach einigen Tagen auf dem Filter gesammelt, erst mit der Mutterlauge, 

 dann mit wenig Wasser gewaschen, bei 110° getrocknet imd gewogen. Der in der Mutterlauge 

 verbliebene Rest läßt sich aus der LösUchkeit des Pikrolonats in Wasser (s. unten) berechnen. 

 Die gewichtsanalytische Bestimmung stimmt mit den nach Kjeldahl gefundenen Werten 

 gut überein. 



Über die Zersetzung der Phosphorwolframsäureniederschläge mit Säuren in ätherisch- 

 wässeriger Lösung s. E. Winterstein*). 



Physiologische Eigenschaften: 1. Die Rolle des Arginins im Pflanzenkörper. 

 Schon die Menge des Arginins, wie es sich in gewissen Keimpflanzen vorfindet, wie z. B. bei 

 Lupiniis luteus, spricht dafür, daß es nur auf Kosten der Eiweißsubstanzen entstanden sein 

 k an n . Eine vorzügliche Qualität von Lupinensamen enthielt nur 2,5% des Gesamtstick- 

 stoffs an Nichteiweißverbindungen. Nach 14 tägiger Keimung unter Lichtabschluß wurde 

 trotz der Verluste bei der Isolierung eine Menge Arginin erhalten, die weit größer war, 

 als im ungekeimten Samen überhaupt vorhanden gewesen sein konnte. Das Arginin muß 

 also vorher ganz oder teilweise Bestandteil von Proteinstoffen gewesen sein 5). 



Während bei etiolierten Keimpflanzen von Lupinus luteus der Arginingehalt während 

 der ersten Entwicklungsperiode sehr stark, später nur langsam anwächst, tritt bei anderen 

 Leguminosen, wie Lupinus albus und angustifolius, Vicia sativa und Pisum sativum das Arginin 

 in der ersten Keimungsperiode zwar auf, nimmt später aber an Menge ab und verschwindet 

 in manchen Fällen bis auf einen, zum sicheren Nachweis kaum noch genügendrai Rest«). 



1) Pauly, Zeitschr. f. physioL Chemie 4Ü, 508 [1904]. 



2) Kossei, Zeitschr. f. physiol. Chemie 25, 177 [1898]. 



3) Weiß, Zeitschr. f. physiol. Chemie 52, 108 [1907]. — S. auch Steudel in Abderhaldens 

 Handbuch der biochem. Arbeitsmethoden 2, II, 498 [1910]. 



*) E. Winterstein, Zeitschr. f. physioL Chemie S4, 153 [1901]. 



5) E. Schulze, Berichte d. Deutsch, ehem. Gesellschaft 24, 1098 [1891]. 



«) E. Schulze, Zeitschr. f. physioL Chemie 24, 18 [1897]. 



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