846 Indol und Indolabkömmlinge. 



Flüssigkeiten, sobald für einen genügenden und fortdauernden Zutritt von Sauerstoff gesorgt 

 ist, überhaupt nicht zur Bildung von Indol. 



Bei der Fäulnis von Eiweißmischungen hemmt die Gegenwart von 50proz. Milchzucker 

 die Indolbildung innerhalb eines 4tägigen Zeitraumes vollständig; in Gegenwart von 200% 

 Milchzucker fehlt Indol selbst gegen Ende des 9. Tages, zu welcher Zeit die Menge des zersetzten 

 Eiweißes 65,6% ausmacht. Galaktose und Mannit (50%) besitzen diese Eigenschaft nicht, 

 wenn auch die Bildung von Indol bei Galaktose sehr beschränkt ist. In Gegenwart von geringen 

 Mengen Glucose und Milchzucker (25%) fällt diese hemmende Wirkvmg derselben aus. 

 Immerhin bildet sich dabei um die Hälfte weniger Indol und Phenol als in den entsprechenden 

 Kontrollversuchen. Am nächsten kommt dann seiner Wirkung nach Mannit (50%), während 

 für Galaktose (25%) die Differenz, welche sich aus dem Vergleich mit dem betreffenden Kontroll- 

 experiment ergibt, schon eine sehr unbedeutende ist^). 



Nach Hoppe-Seyler soll Fibrin auch ohne Mitwirkung von Bakterien unter Indol- 

 bildung zersetzt werden 2) (?). 



Indol entsteht aus Tryptophan bei der Fäulnis durch das gewöhnliche Gemisch von 

 Fäulnisbakterien 3). Das Tryptophan ist eine, wenn nicht gar die Vorstufe des Indols bei der 

 bakteriellen Eiweißzersetzung*). 



Indol wird von vielen Bakterien auf dem Nährboden gebildet. Von den untersuchten 

 Colistämmen gaben mit Ausnahme von 4 Stämmen aus pathologischen Prozessen beim Menschen 

 und dem Darminhalt einer Katze alle die Ehrlichsche IndolreaktionS). Indolbildend sind die 

 beweglichen Gänmgserreger der Milch: Pseudomonas coli^), das aus englischem Hartkäse 

 isolierte Pseudomonas (üowardi'). Indolbildend sind Tetanus bacillus 8), Darmbakterien 9). 

 Bacillus coli 10)^ Bacillus coli icterogenesH), Pyocyaneusi^), Bacillus der Kaninchenseptikämie, 

 Bacillus Marsiliensis Rietsch-Jobert, Bacillus mustelae septicusH). Bacillus murisepticus, 

 Bacterium coli amidolicumi3), Bacillus carotovorus i*), Geflügelcholerabacillus, die Kultur- 

 flüssigkeiten von Spir. Metschnikoff, Bac. denitrificans agilis, cavicida, diphtheriae colum- 

 barum, Proteus vulgaris i6) iß) geben ebenfalls die Ehrlichsche Reaktion^). Durch die 

 Nitritreaktion wnirde Indol nachgewiesen bei Cholera-, Finckler-, Deucke-, Emmerich-, Brieger-, 

 Schweineseuche-, Rotz-, Kartoffel- und Milchsäurebakterien^'). 



Bacillus suipestifer und Bacillus parathypi B. bilden Indol in Pepton (Witte)-BouUlon 

 erst nach längerer Züchtung i»); während in gewöhnlichem Pepton wasser oder Stammlösungen 

 nach Voges und Proskauer diese Erscheinung schon früher zu beobachten istis). Pepton 

 nach Adamkiewicz eignet sich vor allem zur Anstellung dieser Reaktion i8). Bacillen, 

 die auf dem schädüchen Materiale der „Wurstvergiftung" aufgefunden werden20), bilden 

 ebenfalls Indol. 



H. Strauß hat aus dem Mageninhalt eines an bestimmter Art Verdauungsbeschwerden 

 und an Darmstenose leidenden Patienten Kolonien von Bakterien gezüchtet, welche der 



1) S. Simnitzki, Zeitschr. f. physiol. Chemie 39, 113 [1903]. — K. Gorini, Centralbl. f. 

 Bakt. u. Parasitenkde. 13, 790 [1893]. — Hirschler, Zeitschr. f. physiol. Chemie 10, 306 [1886]. — 

 Kruse, Zeitschr. f. Hyg. U, 48 [1894]. — Th. Smith, Joum. exp. med. 1891. 



2) Hoppe-Seyler, Tübinger med. Untersuch., S. 365. 



3) F. G. Hopkins u. S. W. Cole, Joum. of Physiol. 29, 451—466 [1903]. 



*) A. Ellinger u. M. Gentzen, Beiträge z. ehem. Physiol. u. Pathol. 4, 171—174 [1903]. 

 6) A. Böhme, Centralbl. f. Bakt. u. Parasitenkde., I. Abt., 40, 129—133 [1905]. 



6) Th. Gruber, Centralbl. f. Bakt. u. Parasitenkde., II. Abt., 16, 654—663 [1906]. 



7) H. Huß, Centralbl. f. Bakt. u. Parasitenkde., II. Abt., 25, 401—406 [1909]. 



8) Kitasato u. Weyl, Zeitschr. f. Hyg. 8, 404 [1890]. 

 ») Zumft, Kochs Jahresbericht 1892, 238. 



10) F. Rettger, Biochem. Centralbl. 1903, Ref. 466. 



") Flügge, Die Mikroorganismen, 3. Aufl., 2, 365, 373, 406 [1896]. 



12) M. Jakowski, Zeitschr. f. Hyg. 15, 474 [1893]. 



13) M. Morris, Archiv f. Hygiene 30, 304 [1897]. 



14) L. R. Jones, Centralbl. f. Bakt. u. Parasitenkde., II. Abt., T, 65 [1901]. 



15) F. A. Steensma, Centralbl. f. Bakt. u. Parasitenkde., I. Abt., 41, 295—298 [1906]. 



16) F. Kuhn, Archiv f. Hygiene 13, 40 [1891]. 



1') A. Lewandowski, Deutsche med. Wochenschr. 1890, Nr. 51. 



18) K. Poppe, Zeitschr. f. Infektionskrankheiten, paras. Krankh. m. Hygiene d. Haustiere 5, 

 Heft 1 u. 2. November 1908. 



19) Voges u. Proskauer, Zeitschr. f. Hygiene u. Infektionskrankheiten 28, 20 [1898]; Chem. 

 Centralbl. 1898, II, 551. 



20) A. Ehrenberg, Zeitschr. f. physiol. Chemie 11, 240—246 [1887]. 



