Nikotin, Strychnin 529 



Erlenmeyerkolben abpipettiert. Den Kolben läßt man auf einem vorher zum Sieden erhitzten 

 Wasserbad so lange stehen, bis 1 — l,5ccm dunkelgrünlichbraune, dicke Lösung zurück- 

 bleiben, was 1 — li Min. in Anspruch nimmt. Zu der in dem Kolben gebliebenen Lösung gibt 

 man etwa lOccm Wasser, 2 — 3 Tropfen alkoholische Methylrotlösung und titriert mit 

 0,01 n-HCl, bis die grünlich-gelbe Farbe der Lösung in Rot übergeht; der Übergang ist sehr 

 deutlich. 



Eine Halbmikromethode gibt Burmann^) an. 



Für die mikroanalytische Bestimmung des Nikotins in grünen Pflanzen empfehlen Bodndr 

 und Nagy^), die Blätter mehrere Stunden bei 95 — 97" zu trocknen, weil bei niedriger Tem- 

 peratur Verluste durch fermentative Spaltung des Nikotins eintreten sollen. 



Die mikrotitrimetrische Bestimmung des Nikotins im Tabakrauch nach Überführung der 

 Base in das Dipikrat kann auch für die Bestimmung kleiner Mengen Nikotin in Pflanzenschutz- 

 mitteln benutzt werden.') Weiteres über Nachweis und Bestimmung kleiner und kleinster 

 Mengen Nikotin siehe Nagy und Dickmann*), Bodndr und Nagy^), Wenusch«), Hof- 

 mann.') 



Auch elektroinetrisch ist freies und gebundenes Nikotin im Tabakextrakt bestimmbar.^) 



Über die Bestimmung von Chinolin in Nikotin siehe O. Wagner.*) 



Strychnin 



Für die Strychninbestimmungim Strychningetreidc geben Mach und Lederle^") folgendes 

 Verfahren an: 



,,Man verreibt 15 g durch ein 1-mm-Sieb getriebenes Giftgetreide in einer Reibschale innig 

 mit 5ccm einer 30%igen NaOH Lauge, setzt soviel gut bindenden gebrannten Gips hinzu, 

 bis das Gemisch trocken erscheint, tut es in eine Papierpatrone und extrahiert in einem ge- 

 räumigen Soxhlet-Extraktionsapparat mindestens 3 Stunden mit Chloroform. Das zum Auf- 

 fangen des Auszuges dienende Kölbchen stellt man in ein siedendes Wasserbad und benutzt 

 einen gut wirkenden Rückflußkühler. 



Nach Entfernung der Extraktionshülse destilliert man das Chloroform ab, bringt den mit 

 Äther aufgenommenen Extraktionsrückstand in einen Schüttelzylinder, spült das Kölbchen 

 wiederholt mit kleinen Mengen Äther nach — im ganzen werden etwa 50 ccm Äther benötigt 

 — und schüttelt die ätherische Lösung 5mal mit je 20 ccm 1 %iger HCl aus. Die salzsauren 

 Auszüge sammelt man in einem 1 50-ccm-Kölbchen, befreit sie durch Aufkochen von geringen 

 Äthermengen, läßt abkühlen, füllt mit 1 %iger HCl auf und filtriert. 



50 ccm des Filtrats (gleich 5 g Substanz) dampft man auf dem Wasserbade zur Trockne, 

 nimmt mit 100 ccm Wasser auf, erhitzt zum .Sieden, gibt 10 ccm einer 10%igen Kiescl- 

 wolframsäure und sodann 5 ccm einer lO%igen HCl zu und läßt bis zum nächsten Tage 

 stehen. Man sammelt den Niederschlag auf einem Asbestfilter in einem Porzellangoochtiegel, 

 wäscht mit 1 %iger HCl aus, trocknet den in einen Platinschuh oder in einen Platinvolltiegel 

 gestellten Goochtiegel zunächst bei ganz kleiner Flamme und glüht schließlich über dem 

 Teklubrenner bis zum beständigen Gewicht. Strychninmenge = Gewicht des Niederschlages 

 mal 0,4697, Strychninnitratmenge ^ Gewicht des Niederschlages mal 0,5583-" 



Nach einer unveröffentlichten Angabe von Rohweder sind für die Analyse nach Mach 

 und Lederle folgende Abänderungen empfehlenswert: Anwendung von 10g anstatt 15 g 



1) Burmann, J., Helv. chim Acta 13, 1930, 785- 



2) Bodndr, J., und Nagy, V. L., Biochem. Ztschr. 206, 1929, 410. 



3) Barta, L., und Toole, E., Ztschr. f. anal. Chem. 44, 1931, 682. 



*) Nagy, V. L., und Dickmann, A., Ztschr. f. anal. Chem. 94, 1933, 12. 



*) Bodndr, J., und Nagy, V. L., Z. Unters. Lebensmittel 67, 1934, 598; Chem. Ztrbl. 

 1934, II, 1388. 



«) Wenusch, A., Z. Unters. Lebensmittel 67, 1934, 601 ; Chem. Ztrbl. 1934, II, 1387- 



') Kofmann, R., Mikrochemie 18 (N. F.12), 1935, 24 — 30. 



8) Vickery, H. B., und Pucher, G. W., J. biol. Chemistry 84, 1929, 233—241; Chem. 

 Ztbl. 1930, I, 301. 



») Wagner, O., Chem. Ztg. 53, 1929, 326. 

 1») König, J., Unters, landw. wichtiger Stoffe 2, 1926, 368. 



