Derris, Pyrethrum (p.J 



Ein weiteres unspezifisches, auf Rotenon also nur in Abwesenheit anderer Derrisstoffe an- 

 wendbares Verfahren ist das folgende: Von einer Azetonlösung der Probe mit 0,05 — 0,30 mg 

 Rotenon/ccm mischt man im trockenen Reagenzglas 2 ccm mit 2 ccm frischer farbloser 

 alkohol. KOH (10 g KOH -f- 100 ccm 95% Alkohol), stellt genau 2 Min. in ein Wasserbad 

 von 20» und fügt 6 ccm Nitritreagens (1 Vol. HNO3 (CP)-}- 1 Vol. wäßrige 2,5%ige NaNOo- 

 Lösung) zu, mischt, kühlt durch ständiges Schütteln im Wasserbad auf 20" während min- 

 destens 30 Sek. und läßt 1 5 Min. bis zum Farbmaximum darin stehen. In den nächsten 

 30 Min. wird mit Rotenon, ebenso behandelt, kolorimetriert.^) In Derrisharz wird durch 

 dieses Verfahren die Summe von Rotenon und Deguelin erfaßt. Eine wesentlich verbesserte 

 Vorschrift für die Gross-Smith-Methode gibt Goodhue.^) 



Bestimmung des Toxicarols. Haller und La Forge^) benutzen hierzu ein Verfahren, 

 das auf der Bildung schwerlöslicher Alkaliverbindungen beruht. Auch Jones, Campbell 

 und Sullivan*) sowie Martin und Tattersfield^) bedienten sich dieses Verfahrens. Die 

 Mutterlauge von der Rotenonkristallisation als CCI4- Verbindung wird so gut wie möglich 

 von CCI4 befreit, der Rückstand in Äther gelöst und 3mal mit je 50 ccm 5%iger wäßriger 

 KgCOg-Lösung ausgeschüttelt. Die vereinigten Alkaliauszüge werden mit Äther gewaschen, 

 beide Äthermengen vereinigt und mit Wasser gewaschen. Die Differenz: Rotenonfreies 

 Derrisharz minus Derrisharz nach Alkalibehandlung gibt ungefähr den Toxicarolgehalt an. 

 Das Ansäuern der Alkaliprodukte, die teils ausfallen, teils im Alkali in Lösung bleiben, 

 liefert kein reines Toxicarol, sondern ein Harz. 



Kolorimetrisch müßte sich Toxicarol als Differenz zwischen dem Wert der Blaukolorimetrie 

 nach Fischer und Nitsche und dem Wert nach Gross und Smith ungefähr bestimmen 

 lassen. Eine Bestätigung hierfür steht noch aus. 



Pyrethrum 



Da man die chemisch-analytischen Verfahren der Pyrethrinbestimmung zur Bewertung 

 von Pyrethrum früher für unzuverlässig und für den insektiziden Wert nicht maßgebend 

 hielt, griff man anfangs zu biologischen Prüfverfahren. 



Nach einer von Saling*) beschriebenen biologischen Methode werden Sg Substanz in 

 einem Becherglase mit 20 g Paraffinum liquidum D. A. B. im Wasserbade unter mehrmaligem 

 gleichmäßigem Verrühren des Pulvers 1 Stunde bei 100» extrahiert. Die ziemlich dickflüssige 

 gelbbraune Masse wird filtriert. Saling bedient sich zur Übertragung des pyrethrumhaltigen 

 Ölfiltrates in die Mundwerkzeuge der Versuchstiere durch Austarierung graduierter Glas- 

 kapillaren. Er benutzt für die Prüfung des Extraktes Stubenfliegen und große amerikanische 

 Schaben, die in Rückenlage fixiert werden. Als tödliche Dosis des Pyrethrumparaffinöl- 

 extraktes ermittelte Saling für Stubenfliegen etwa 0,1 5 mg, für Schaben 10 — 12 mg Paraffin- 

 ölextrakt eines gut wirkenden Insektenpulvers. Tattersfield und Morris') benutzten zur 

 biologischen Prüfung von Pyrethrum die Blattlaus Aphis nwiicis. Vom Normenausschuß der 

 Insecticide and Desinfectant Manuf acturers' Association ^) wurde vorgeschlagen, die Lähmungs- 

 zeit von Blatella germanica als Maßstab für die Wirksamkeit von Pyrethrumspritzmitteln zu 

 benutzen. Eine Schabe wird unter genau festgelegten Bedingungen mit einer konstanten 

 Flüssigkeitsmenge bespritzt und die Zeit bis zur Rückenlage des Tieres (Lähmungszeit) mit 

 der Stoppuhr gemessen. Es wird der Mittelwert aus 10 Proben genommen. Die Pyrethrum- 

 konzentration ( in Ibs/gallon) kann aus den Lähmungszeiten (in Sek.) an Hand einer Tabelle 

 abgelesen werden. 



1) Gross, C. R., and Smith , C. M., J. Ass. off. agric. Chemists 17, 1934, 336—339; Chem. 

 Ztrbl. 1934, II, 1673. 



2) Goodhue, L.D., J. Ass. off. agr. Chem. 19, 1936, II8— 120; Chem. Ztrbl. 1936, II, 2602. 



3) Haller, H. L., and La Forge, F. B., J. Am. Chem. Soc. 56, 1934, 2415- 



*) Jones, H. A., Campbell, F. L., and Sullivan, W. N., J. econ. Ent. 28, 1935, 285. 



5) Martin, J. T., and Tattersfield, F., Ann. Appl. Biol. 23, 1936, 880—889- 



«) Saling, T., Ztschr. f. Desinf. u. Gesundheitsw. 20, 1928, 38. 



') Tattersfield, F., and Morris. H. M., Bull. Ent. Res. 14, 1924, 223- 



*) Soap 8, 1932, 107; Manschke, R., Die kranke Pflanze 9, 1932, 44. 



