126 Wundgewebe und Regeneration. 



der neuen Haut verschieden lange Zeit: Vaucheria bildete in 10%iger Glukose 

 die neue Zellhaut bisweilen schon innerhalb der ersten Stunde, Conferva und 

 Zellen von Prothallien bildeten sie nach 1—2 Tagen, Zvgnema brauchte 

 3—4 Tage, Zellen von Funaria und Helodea 8—10" Tage und darüber. 

 Andererseits gelang es nicht, durch Plasmolyse mit Zuckerlösungen die 

 Zellen von Desmidiazeen (Desmidium, Euastrum, Cosmariuni, Penium, 

 Pleurotaenium, Clostenum, Tetmemorus) und Diatomeen {Melosira) zur 

 Bildung neuer Membranen anzuregen. Ebenso resultatlos fielen die Ver- 

 suche mit manchen Prothallien {Blechnum, Ceratopteris), mit Lemna und 

 Vallisneria, sowie mit Dikotyledonen {Syniphoricarpus) aus. Was die 

 letzteren anbetrifft, so ist wohl der negative Ausfall der Experimente nur 

 in der von Klebs gewählten Art der Versuchsanstellung oder in der Spezi- 

 fität seines Versuchsobjektes zu suchen; jedenfalls ist die von Klebs aus- 

 gesprochene Vermutung, daß den Dikotyledonen allgemein die Fähig- 

 keit, neue Membranen zu bilden, abgehe, in dieser allgemeinen Fassung 

 nicht zutreffend. Das Plasma von Wurzelhaaren der Dikotyledonen bildet 

 nach Einwirkung der Plasmolyse neue Membranen; dasselbe gilt für das 

 Plasma der Pollenschläuche ^j; weiterhin konnte Townsend an plasmoly- 

 sierten Siebröhren von Bryonia und Cucurbita neue Membranen entstehen 

 sehen 2). Membranbildung an plasmolysierten Brennhaaren von Urtica 

 beobachtete Palla^), auf dessen Befunde später noch zurückzukommen 

 sein wird, und namentlich werden von Mann zahlreiche Dikotyledonen 

 angeführt {Sedum, Caltha, Primula, Jussiaea u. a.), die zur Bildung von 

 Restitutionsmembranen befähigt sind*). 



Je nach dem osmotischen Druck der einwirkenden Lösung erreicht 

 bekanntlich die Plasmolyse einen verschiedenen Grad: entweder es löst 

 sich der Plasmaschlauch nur stellenweise von seiner Membran ab, oder er 

 schrumpft zu einer Kugel zusammen, die allseits sich von der Haut ge- 

 trennt hat; im ersten Falle entsteht nur eine neue Memlirankappe, die 

 sich rings an die mit dem Plasma in Kontakt gebliebene alte Haut ansetzt, 

 im zweiten Fall eine komplette Umhüllung für die Plasmakugel. 



1) Vgl. Palla, Beobachtungen über Zellhautbildung an des Zellkerns beraubtem 

 Protoplasma (Flora 1890, 73, 314); Acqua, Contribuzione alla conosc. d. cellula veget. 

 (Malpighia 1891, 5, 3). — ,,Normaler"weise spielt sich derselbe Vorgang der Kappen- 

 bildung in den Wurzelhaaren der javanischen Farne Drymoglossnm mmnmdarifolhun und 

 D. pilosellojdes ab (nach Haberlandt, Physiologische Pflanzenanatomie 1904, 4. Aufl., 

 205): „Bei länger andauerndem Wassermangel zieht sich nämlich das Plasma des ver- 

 trocknenden Wurzelhaares samt dem Zellkern in den Basalteil des Haares zurück, 

 über welchem sich eine mehr oder minder regelmäßige Einschnürung des Haarkörper& 

 bemerklich macht. An dieser Stelle wird dann eine Membrankappe gebildet, welche 

 den nunmehr eingekapselten Protoplasten des Haares von dem vertrockneten Teile 

 abgrenzt. Letzterer löst sich dann ab, und die so entstandene Wurzelhaaranlage harrt 

 nur des belebenden Wassertropfens, um alsbald zu einem neuen Haar auszuwachsen." 

 — Die Frage, ob nicht auch die Kappenbildungen in Bastfasern (Krabbe, Beitrag zur 

 Kenntnis der Struktur und des Wachstums vegetabilischer Zellhäute. Jahrb. f. wiss. Bot. 

 1887, 18, 846) den oben erwähnten abnormen Bildungen im wesentlichen gleich- 

 zustellen sind, hat Reinhardt bereits aufgeworfen (Plasmolytische Studien zur Kenntnis 

 des Wachstums der Zellmembran. Festschr. f. Schwendener 1899, 425). 



2) TowxsEND, Einfluß des Zellkerns auf die Bildung der Zellhaut (Jahrb. f. 

 wiss. Bot. 1897, 30, 484). 



3) Palla, Über Zellhautbildung kernloser Plasmateile (Ber. d. D. bot. Ges. 

 1906, 24, 408). 



4) Mann, Untersuchungen über Zellhautbildung um plasmolysierte Protoplasten. 

 Borna-Leipzig 1906. 



