Dreizehntes Kapitel. Die Zelle. 24Q 



von 2 Volumina konzentrierter wässriger Borsäurelösung und 3 Vo- 

 lumina gesättig-ter wässriger Sublimatlösung. Nach 3 stündiger Ein- 

 wirkung wird in 2°,o Formollösung aufgehoben. Fol fixiert Tintinnen 

 mit Eisenperchlorid (vgl. viertes Kapitel Nr. 88 S. 78). Noch zahl- 

 reiche andere, oft sehr sonderbar komplizierte Methoden sind ange- 

 geben, für deren Komplikation ein zureichender Grund nicht einzu- 

 sehen ist. Man wird im allgemeinen mit den im vierten Kapitel 

 beschriebenen Mitteln auskommen, nur muß man, da wir eben kein 

 allen Anforderungen genügendes Reagens haben, jedesmal erst aus- 

 probieren, welche Vorschrift anzuwenden ist. Die Arbeiten der Au- 

 toren, d. h. die zu berücksichtigende Literatur, geben hierüber den 

 nötigen Aufschluß. 



Sehr originell ist die Anwendung des Methylgrüns in stark saurer 

 Lösung. Bütschli hat, wenn ich nicht irre, als der erste die gefärbte 

 Essigsäure für Protozoen als zugleich fixierendes und färbendes Re- 

 agens empfohlen. Beim Methylgrün verfährt man nun folgender- 

 maßen: Man reinigt es zunächst vom Methylviolett, indem man seine 

 konzentrierte wässrige Lösung mit Amylalkohol (nach Fischer) oder 

 mit Chloroform (nach Mayer) schüttelt. Diese nunmehr rein grüne 

 Farbe wird mit Essigsäure versetzt, so daß die Farbflotte 1°/^ der 

 Säure enthält. Resultat: reine Kernfärbung und gute Fixierung. 



Interessant ist folgende Methode von Rhumbler. Man fixiert in 

 Pikrinschwefelsäure (viertes Kapitel) oder Alkohol und färbt in nach- 

 stehendem Gemisch: i"'^ wässriges Methylgrün 50 Teile, 0,8 g Eosin in 

 50°/^ Alkohol gelöst 50 Teile, Alkohol absolutus 50 Teile. Schnitte oder 

 ganze Protozoen werden darin '/^ Stunde gelassen, dann wird in Wasser 

 ausgewaschen und in Alkohol von steigender Konzentration schnell 

 gehärtet, so daß die ganze Prozedur nach dem Färben in ' ^ Stunde 

 beendet ist. Montiert wird beliebig. Was zur Zeit der Fixierung 

 noch lebendig war, ist grellrot gefärbt; was abgestorben war, er- 

 scheint ebenso wie färbbare anorganische Einschlüsse grellgrün. Wo 

 beide Substanzen, lebendige und tote, gemischt sich finden, da ist 

 der Farbenton rotviolett, violett, blau oder blaugrün. 



Protozoen müssen unter Umständen geschnitten werden. Im sechs- 

 ten Kapitel (S. 104) ist gezeigt worden, daß das Mikroaquarium von 

 Schaudinn eine sehr leichte Einschmelzung in Paraffin ermöglicht. 

 Die Schnitte können dann je nach der vorausgegangenen Fixierung 

 mit Eisenhämatoxylin, Safranin, Fuchsin oder dem Flemmingschen 

 Orangeverfahren gefärbt werden (achtes Kapitel). Safranin und die 

 anderen basischen Aniline werden die Kernstrukturen besonders her- 

 vorheben, die Eisenhämatoxylinlacke sind zur Darstellung der Centro- 



