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verhalten sich einzelne Phenolaldehyde, Glyoxal, Sulfaldehyd, Dextrose, Laevulose 

 und p-Nitrophtalaldehyd negativ. Durch manche Oxydationsmittel kann die Reaktion 

 auch ausgelöst werden, vielleicht auch durch manche Ketone. 



2. Eine Silberlösung kann gleichfalls in vielen Fällen zum Nachweis von 

 Aldehyden herangezogen werden. Diese gehen bei der makrochemischen Reaktion 

 den sogenannten Silberspiegel. TOLLENS' Reagens besteht aus 3 g Silbernitrat in 

 30 ccm Ammoniakfliissigkeit (spez. Gew. = 0,923) und 30 ccm lOproz. Natronlauge. 

 Man bewahrt die beiden Lösungen gesondert und schützt die Silberlösung vor Licht. 

 Unmittelbar vor dem Gebrauche mischt man die beiden Flüssigkeiten zu gleichen 

 Volumteilen. 



Für den Nachweis von Aldehyden im Gewebe taugt das TouuENSscke Reagens 

 kaum, weil die Natronlauge und das Ammoniak den Zellinhalt, insbesondere den 

 Kern und die Chromatophoren zerstören. Hingegen gab mir eine wässerige lproz. 

 Lösung von Silbernitrat bessere Resultate, weil der Zellinhalt gestaltlich nicht sehr 

 verändert wird und die reduzierenden Substanzen lokal angezeigt werden. Die 

 Schwärzung des Objektes muß mit großer Reserve gedeutet werden, weil nicht bloß 

 Aldehyde, sondern noch andere Körper die Silberreduktion geben, z. B. manche 

 aromatische Amine, Alkaloide, mehrwertige Phenole usw. Dasselbe gilt mutatis 

 mutandis auch von den anderen genannten Aldehydreaktionen. 



3. Pyrrollösung. Ich benutze eine lOproz. Lösung in absolutem Alkohol. In 

 diese wird der Schnitt i j 2 Minute eingetaucht, aus der Lösung herausgenommen und 

 dann mit konzentrierter Salzsäure behandelt. 



Spezielles, a) Kutikula. Wenn man frische Schnitte von verschiedenen 

 Pflanzen mit dem SoHiFFschen Reagens behandelt, so färbt sich in einer großen 

 Zahl von Fällen die Kutikula nach Geneau de Lamarliere (V) rotviolett, was 

 ich bestätigen kann. Als Übungsbeispiel empfehle ich das Blatt von Petroselinum 

 sativum, Fuchsia globosa und Campanula sp. Die Kutikula wird bei diesen Pflanzen 

 scharf und deutlich ausgefärbt. Im Gegensatz hierzu gibt es aber Epidermen, die 

 keine scharf abgesetzte Kutikula aufweisen, sondern deren Kutikula allmählich in 

 Kutikularschichten übergeht, so daß auch der Farbenton dementsprechend von außen 

 nach innen an Intensität abnimmt. Endlich fand ich Fälle, wo die Epidermiswand 

 — ausgenommen die Schließzellen — sich mit Schiffs Reagens gar nicht oder fast 

 gar nicht färbt. Das ist z. B. bei der Epidermis der Scheinknolle von Maxiilaria 

 variabilis und der Blattoberhaut von Sarcanthus rostratus der Fall. Daraus geht 

 hervor, daß entweder mit der Kutikularisierung das Auftreten von Aldehyden nicht 

 notwendig verbunden sein muß oder daß Aldehyde vorliegen, die durch das ScHiFFsche 

 Reagens nicht angezeigt werden. Dafür, daß in der Kutikula häufig Aldehyde auf- 

 treten, spricht auch die Tatsache, daß die Kutikula sich mit Silbersalzen oft bräunt 

 oder schwärzt. 



b) Verholzte und andere Membranen. Geneau fand auch, daß die Libriform- 

 fasern und die Gefäße mit dem ScHiFFschen Reagens die Violettfärbung geben und 

 ich kann hinzufügen, daß überhaupt jede von mir geprüfte verholzte Zellhaut die 

 Reaktion zeigt. Von vornherein dürfte man geneigt sein, das Lignin für die Re- 

 aktion verantwortlich zu machen, um so mehr als ja nach den Untersuchungen von 

 Gräfe (I), Czapek (IV) und anderen tatsächlich im Lignin Aldehyde vorhanden 

 sind. Allein Geneau bemerkt, daß die ScuiFFsche Reaktion mit verholzten Zell- 

 wänden auch eintritt, wenn man vorher das Lignin durch oxydierende oder redu- 

 zierende Mittel zerstört hat. Er schließt daraus, daß der Körper, der in verholzten 

 Membranen die ScHiFFsche Reaktion veranlaßt, eine von dem Lignin verschiedene 

 Substanz ist. Das mag bei den von Lignin befreiten Zellhäuten der Fall sein, es 

 schließt dies aber nicht aus, daß sich in der intakten verholzten Membran die das 



