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haft, wo dieses Formaldehyd entsteht, ob im Chlorophyllkorn oder im übrigen Zell- 

 inhalt, da es ja auf verschiedene Weise intra vitam und post mortem entstehen kann. 



Daher wäre es ein großer Gewinn, wenn es gelänge, das Aldehyd, sei es das 

 Formaldehyd oder ein anderes direkt im Chlorophyllkorn nachzuweisen. Das ist 

 aber bisher einwandfrei nicht gelungen. Immerhin sollen einige Erfahrungen hier 

 mitgeteilt werden, die nicht ohne Interesse sind und vielleicht anderen Beobachtern 

 von Nutzen sein können. 



Was zunächst die Chlorophyllkörner unter der Einwirkung des SCHIFFSchen 

 Reagens anbelangt, so ist zu bemerken, daß sich viele (Boehmeria utilis, Aloe- Arten. 

 Selaginella Martensii u. a.) rot färben, aber meist erst nach mehreren Stunden oder 

 Tagen. Dies spricht mehr für eine postmortale Entstehung des Aldehyds. Haben 

 doch auch Willstätter und Stoll (1,379) gezeigt, daß zwar nicht der Chlorophyll- 

 farbstoff selbst, wohl aber gewisse seiner Begleiter im Lichte Formaldehyd ab- 

 splittern lassen. Anders ist es, nach Molisch (VI), bei der Einwirkung einer 

 lproz. Lösung von Silbernitrat auf lebende Chlorophyllkörner. Diese haben bei 

 den meisten Gewächsen das Vermögen, Silbersalze, z. B. salpetersaures Silber in 

 einer 1 / 4 — lproz. Lösung geboten, im Lichte wie im Finstern so energisch zu re- 

 duzieren, daß sie sich infolge des abgeschiedenen Silbers rasch braun und dann 

 schwarz färben (Fig. 58). Nur das lebende Chlorophyllkorn zeigt die Silberabschei- 

 dung, das tote aber nicht. Dies wird zwar von Czapek (III) bestritten, weil seiner 

 Meinung nach mit Bleizuckerlösung behandelte Schnitte doch die Schwärzung der 

 Chromatophoren aufweisen, allein eine Nachprüfung (Molisch VII) führte mich zu 

 der Überzeugung, daß, wenn die Chlorophyllkörner mit Bleizucker wirklich abgetötet 

 worden sind, sie die Reduktion des Silbersalzes nicht mehr durchzuführen imstande 

 sind. Welcher Körper die Reduktion veranlaßt, läßt sich, da ja viele dafür ver- 

 antwortlich gemacht werden können, nicht bestimmt sagen. Chlorophyllfarbstoff, 

 Karotin und Xantophyll sind es nicht. Verschiedene Erfahrungen und Erwägungen 

 lenken die Aufmerksamkeit auf die durch ihre heftigen Atombewegungen aus- 

 gezeichneten Aldehyde, auf Wasserstoffsuperoxyd und Depside (Czapek III), aber 

 ein Beweis, daß diese Körper die Reduktion besorgen, ist vorläufig nicht erbracht 

 (Molisch VI, 471). 



OH 

 Vanillin, C 8 U s 3 ,=C e B, <- OCH 3 



CHO 



ist Protokatechualdehyd-3-methyläther. 



Vorkommen. 

 Es findet sich als kristallinischer Überzug in seidenglänzenden Nadeln auf 

 der Oberfläche der (im Handel befindlichen) Früchte von Vanilla planifolia. Die 

 erntereife Frucht enthält keine merklichen Mengen von Vanillin in freiem Zu- 

 stande und dementsprechend fehlt ihr auch der Vanillegeruch. Das Vanillin entsteht 

 erst postmortal (Molisch I, 46, 49; Busse I, 102 d. Sep.; J. Behrens I). Ferner 

 kommt es vor in den Blüten von Nigritella suaveolens, Scorzonera hispanica, Spiraea 

 rjlmaria, in verschiedenen Harzen usw., doch ist in einzelnen Fällen noch der Nach- 

 weis zu erbringen, ob das Vanillin schon in der lebenden Pflanze vorhanden war. 



Eigenschaften. Monokline Nadeln vom Geruch und Geschmack 

 der Vanille. Leicht löslich in Alkohol, Äther, Schwefelkohlenstoff und 

 Chloroform, schwer löslich in kaltem Wasser, leichter in heißem. Die 

 wässerige Lösung wird mit Eisenchlorid blau. Vanille gibt nach 



Mo lisch, Mikrochemie der Pflanze. 3. Aufl. 



