§ 3. Die Eiweißstoffe der höheren Pilze. 127 



Die Flechte Parmelia scruposa enthält nach Weigelt (1) 7,5% Protein 

 und Hansteen (2) fand in Cetraria islandica 2,81%, in Cetr. nivalis 2,35% 

 N-haltige Stoffe. Neuere Analysen (Salkowski, Ellrodt) (3) geben mehr 

 an Eiweiß für die letzteren Flechten an. Cetraria islandica: 10,04% HgO 

 und 4,73% Eiweiß; Cladonia rangiferina 10,59 resp. 11,7% Wasser und 

 4,10 resp. 4,11% Rohprotein. 



Im Peridium von Elaphomyces hirtus fand Issoglio (4) 9,25% Eiweiß, 

 im Kern 21,78%. 



Der Eiweißgehalt der Schimmelpilze wurde oft bestimmt. Für Peni- 

 cillium, auf Zuckergelatine cultiviert, gibt N. Sieber (5) 29,88% Protein- 

 gehalt in der Trockensubstanz an, während derselbe Pilz auf Salmiak-Zucker- 

 lösung 28,95% Eiweiß, also fast ebensoviel ergab. Auch Abderhalden 

 und Rona (6) fanden ähnliches bei Kultur von Aspergillus niger nach Dar- 

 reichung verschiedener N- Quellen. Der Nitratpilz enthielt 3,68% N, der 

 Glykokollpilz 3,85%, der Glutaminsäurepilz 3,52% Stickstoff. Nach 

 Stutzer sind vom Gesamt-N der Schimmelpilze, der 3,77% der Trocken- 

 substanz bildet, 39,4% Eiweiß-N, 40,75% Nuclein-N und 19,86% Amid- 

 und Pepton-N. Marschall (7) kultivierte Aspergillus niger, Penicillium 

 glaucum und Rhizopus nigricans auf Pepton-Zuckerbouillon und fand für 

 die genannten drei Pilze 30,4%, 40,2% und 43,4% Eiweiß in der Trocken- 

 substanz. Die Gonidien von Penicillium enthalten nach Gramer (8) 28,44% 

 Eiweiß. Aso (9) gab für Aspergillus oryzae 6,38% Gesamt-N und 39,875% 

 Rohprotein in der Trockensubstanz an. 



Im übrigen sind die Eiweißstoffe der höheren Pilze noch sehr wenig 

 untersucht und wenig gekannt. Die einschlägigen Studien von Winter- 

 stein, Hofmann und Reuter (1 0) haben gezeigt, daß die Verhältnisse be- 

 züglich der Pilz'proteine anders liegen als bei den Samenproteinen. Es ge- 

 lingt hier nicht mit 10% NaCl Eiweiß reichlich in Lösung zu bringen, wohl 

 aber kann man, wie Reuter für Boletus edulis und Zellner (11) für Amanita 

 muscaria zeigten, durch verdünnte Laugen Eiweiß extrahieren, sowie auch 

 nach Behandlung mit konzentrierter Salzsäure. Welcher Gruppe diese Pro- 

 teide zuzurechnen sind, weiß man nicht. Auch ist näher festzustellen, welchen 

 Proteinen dieEiweißkrystalle zuzurechnen sind, welche bei Pilzen vorkommen. 

 VAN Tieghem (12) entdeckte solche Gebilde in den Fruchtträgern von Pilo- 

 bolus und anderen Mucorineen („Mucorin" van Tieghems). Bambeke (13) 

 wies bei Autobasidiomyceten Eiweißkrystalle in weiter Verbreitung nach. 

 Möglicherweise kommen bei Pilzen phosphorhaltige Proteine nach Analogie 

 des tierischen Ovovitellin und Casein vor. 



In einigen Fällen wurde Pilzeiweiß nach der FiscHERschen Ester- 

 methode quantitativ auf Aminosäuren untersucht. Nach ReUter liefert 

 das Eiweiß aus Boletus edulis viel Prolin, Asparaginsäure und Glutamin- 



1) Weigelt, Journ. prakt. Chem., io6, 193. — 2) B. Hansteen, Chem.-Ztg. 

 1906, p. 638. — 3) E. Salkowski, Ztsch. physiol. Cham., 104, 105 (1919). G. Ell 

 RODT u. R. KuNZ, Brennerei-Ztg., 35, 8171 (1918). — 4) G. Issoglio, Gazz. chim 

 ital., 47, 31 (1917). — 5) N. Sieber, Journ. prakt. Chem., 23, 412 (1881). — 

 6) E. Abderhalden u. P. Rona, Ztsch. physiol. Chem., 46, 179 (1905). — 7) Mar 

 SCHALL, Arch. Hyg., 28, 16 (1897). — 8) E. Gramer, Arch. Hyg., 20, 196 (1894) 



— 9) K. Aso, Bull. Coli. Agr. Tokyo, 4, 81 (1900). — 10) E. Winterstein, Ztsch 

 physiol. Chem., 26, 438 (1899\ Winterstein u. J. Hofmann, Hofmeist. Beitn, 2 

 404 (1902). Winterstein i. C. Reuter, Zentr. Bakt., II, 24, 666 (1912). Landw 

 Vers.-Stat., 79/80, p. 541 (1913). C. Reuter, Ztsch. physiol. Chem., 78, 167 (1912) 



— 11) J. Zellneh, Monatsh. Chem., 27, 281 (1906). — 12) van Tieghem, Ann 

 Sei. Nat. (6), i, p. 6 (1875). — 13) Ch. van Bambeke, BuU. Ac. Roy. Belg. (1902) 

 p. 227. 



