144 Vierunddreißigstes Kap. : Die Resorption v. Eiweißstoffen durch Bacterien u. Pilze. 



konstatierte Indolpropionsäure zusammen, und so haben wir alle Stufen des 

 Tryptophanabbaues beisammen : 



Tryptophan: COOH • CHNH^ • CHg • C^^jJJ*^NH 

 Indolpropionsäure: COOH • CH2 • CHg • G<^^^«J|«);NH 

 Indolessigsäure: COOH • CHj • C^^^||*)>NH (Scatolcarbonsäure) 

 Scatol oder^-Methylindol: CH3. C^^^«|J*^NH 

 Indol: HC^^^«JJ*)>NH 



Die Bildung eines Amins aus Tryptophan durch CO 2- Abspaltung kennt 

 man nicht. Daß das aus dem Eiweiß gebildete Tryptophan eine Vorstufe 

 der Indolbildung darstellt, wurde im Sinne einer von Nencki geäußerten 

 Vermutung (1889) durch Ellinger und Gentzen 1903 (1) außer Zweifel 

 gestellt. Da man nicht allgemein in Bacterienkulturen die Tryptophan- 

 reaction erhält (2), so dürfte die Weiterverarbeitung oft sehr rasch geschehen. 

 Ein Zusammenhang mit Chinolinderivaten im Stoffwechsel, wie er sich 

 anderenorts ergeben hat, kennt man von der bacteriellen Tryptophanver- 

 arbeitung nicht (3). 



Indol, weniger Scatol, ist das häufigste Produkt des Tryptophans bei 

 der bacteriellen Eiweißfäulnis. Selter (4) fand als beste Bedingung für 

 die reichhche Indolbildung Darreichung einer 10%igen Peptonlösung mit 

 Zusatz von 0,5 Na2HP04 und 0,1 MgS04. Ein Verzeichnis zahlreicher 

 Indol bildender Bacterien findet man bei Lewandowski (5); erwähnt 

 sei die Indolbildung durch Choleravibrionen (6), Tetanusbacillus (7), Bac. 

 pyocyaneus (8), bei Darmbacterien (9), besonders durch Bac. coh (10), 

 und durch Proteus vulgaris (11). Von Proteus kennt man aber eine nicht 

 Indol bildende Rasse, Bact. anindologenes (12). Actinomyceten bilden 

 kein Indol (13). 



Zuckergegenwart, besonders Dextrose, pflegt die Indolbildung aus- 

 gesprochen zu hemmen, in Übereinstimmung mit anderen Erfahrungen 

 über den bacteriellen Eiweißzerfall (14). Nur dann fehlt dieser hemmende 

 Einfluß, wenn die betreffenden Bacterien den dargereichten Zucker nicht 

 anzugreifen vermögen. Bei Darreichung von Pepton ist übrigens nicht zu 

 vergessen, daß die Indolmenge einerseits vom Verbrauch und NichtVerbrauch 

 des Tryptophans abhängen muß; je weniger Pepton zur Verfügung steht, 

 desto mehr Tryptophan fällt relativ der Indolbildung anheim. Auch Indol 



1) Elltnger u. Gentzen, Hofmeist. Beitr., 4, 171 (1903). — 2) Vgl. L. Banspach, 

 Diss. Stuttgart 1912. — 3) Überführung von Tetrahydrochinolin in Scatol : M. Padoa 

 u. ScAGLiARiNi, Atti Acc. Liuc. Rom. (ö), 17, I, 728. — 4) Selter, Zentr. Bakt., 

 I, 51, 465 (1909). Auch J. Mendel, Ebenda, II, 29, 290 (1911). — 5) A. Lewan- 

 dowski, Deutsche med. Woch.schr. (1890), p. 1186. — 6) Hierzu: L. Mazzetti, 

 Zentr. Bakt., 1, 68, 129 (1913). Baumgarten u. Nothmann, Mediz. Feldbl. d. 

 X. Armee 1916, Nr. 4. — 7) Kitas ato u. Weyl, Ztsch. Hyg., 8, 404 (1890). — 

 8) M. Jakowski, Ebenda, 15, 474 (1893). — 9) Zumft, Kochs Jahresber. (1892), 

 p. 238; A. Berthelot u. M. Bertrand, Soc. Biol., 71, 232 (1911). — 10) 

 F. Rettger, Biochem. Zentr. (1903), Ref. 466. — 11) F. Kuhn, Arch. Hyg., 13, 

 40 (1891). Berthelot, Compt. rend., 156, 641 (1913). — 12) J. van Loghem, 

 Fol. microbiol., j, H. 3 (1915). — 13) Vgl. E. Mace, Compt. rend., 141, 147 (1905). 

 — 14) Vgl. Hirschler, Ztsch. physiol. Chem., 10, 306 (1886). K. Gorini, Zentr. 

 Bakt., 73, 790 (1893). S. Simnitzki, Ztsch. physiol. Chem., 39, 99 (1903). W. C. 

 de Graaff, Zentr. Bakt., I, 49, IIb (1909). A. Distaso, Soc. Biol., 75, 200 (1913). 

 A. Fischer, Biochem. Ztsch., 70, 105 (1915). 



