1 48 Vierunddreißigstes Kap. : Die Resorption v. Eiweißstoffen durch Bacterion u. Pilze. 



man durch Ackermann (1) die reduktive Desamidierung des Histidins 

 unter Bildung von /3-Imidazolylpropionsäure. Endlich ist durch Raistrick(2) 

 gezeigt worden, daß die Bacterien der Goh-Ty-Gruppe Histidin ohne Re- 

 duktion in die aininofreie ungesättigte Urocaninsäure überführen: 

 C3H3N2 . CH2 . CHlNHa) . COOH = NH3 + C3H3N2 • CH : GH • COOK. 



Trimethylamin wird bei Eiweißfäulnis sehr oft gefunden (3). Man 

 meint, daß es seine Herkunft von beigemengten Lecithiden aus dem Cholin 

 nimmt. 



Daß bei Fäulnis von Fleisch außer Kohlensäure Schwefelwasserstoff 

 entweicht, wird schon 1797 von Crawford (4) erwähnt. Von 51 Bacterien- 

 arten, die Morris (5) hinsichtlich Schwefelwasserstoffbildung untersuchte, 

 waren nur wenige nicht SH „-Produzenten. Choleravibrionen bilden nach 

 Kempner(6) bei Kultur im Hühnerei SHg. Zahlreiche weitere Angaben 

 über SHa-Bildung hat Rubner{7) geliefert. Zweifellos stammt der Schwefel- 

 wasserstoff aus den Cystingruppen des Eiweiß. Außer durch die gewöhnUchen 

 Proben kann man nach Porcher (8) den Schwefelwasserstoff mittels der 

 Thioninprobe mit p-Phenylendiamin und Eisenchlorid nachweisen. Nencki 

 und Sieber (9) wiesen zuerst das häuf ige Vorkommen von Methylmercaptan 

 bei der Eiweißfäulnis nach, was durch die Untersuchungen von Selitrenny, 

 RUBNER, ZoJA, Mörner bestätigt worden ist (10). Methylmercaptan 

 findet sich besonders bei der anaeroben Fäulnis reichlich (11). Nencki (12) 

 wies das Mercaptan nach, indem er das Destillat aus dem angesäuerten 

 Fäulnisgemisch in 3% Quecksilbercyanidlösung auffing, den Niederschlag 

 mit HCl zerlegte und das entstehende Gas in essigsaures Blei leitete. Mer- 

 captänbildung wird ferner nachgewiesen mit der Probe von Denigös: 

 Grünfärbung mit 0,5% Isatin in konzentrierter Schwefelsäure. Sie gelingt 

 nachPETRi undMAASSEN (13) besonders stark bei Bac. esterificans. Nach 

 Blumenthal (1 4) kann bis 23% des in Fibrin enthaltenen Schwefels bei der 

 Fäulnis als Methylmercaptan wiedergefunden werden. Die Entstehung von 

 Methylmercaptan ist durch Wohlgemuth auch bei der bacteriellen Ver- 

 arbeitung von reinem Cystin sichergestellt worden (15). Gleichzeitig wurde 

 durch diesen Forscher die Entstehung von Äthylsulfid (C2H*5)2 • S beobachtet. 

 Der Abbau des Cystins vollzieht sich wahrscheinUch größtenteils so, daß 

 zunächst Cystein entsteht. Dieses wird durch reduktive Desamidierung 

 in /S-Thiomilchsäure übergeführt, welche unter Verkürzung der C- Kette 

 in Thioglykolsäure übergeht; letztere liefert unter CO 2- Abspaltung Methyl- 

 mercaptan und dieses schließlich Schwefelwasserstoff: Cystein: SH • CHj • 

 CHNHg . COOH; /S-Thiomilchsäure : SH • CH2 • CHg • COOH ; Thioglykol- 



1) D. Ackermann, Ztsch. physiol. Chem., 65, 604 (1910). — 2) H. Raistrick, 

 Biochem. Journ., 11, 71 (1917). — 3) Yoshimura, 1. c. Trennung von Mono- u. 

 Diaminen: F. de Filippi, Ztsch. physiol. Chem., 4g, 433 (1906). — 4) Crawford, 

 Crells Annal. 1797, I, 335. — 5) M. Morris, Arch. Hyg., 30, 304 (1897). — 

 6) Kempner, Ebenda, 2t, 317 (1894). — 7) M. Rubner, Ebenda, 16, 62 (1893). 

 Jones, Zentr. Bakt., II (1901), p. 65. Nadson, Botan. Zentr., 96, 591 (1904). 

 T. Sasaki u. J. Otsuka, Biochem. Ztsch.. 39, 208 (1912). — ft) Ch. Porcher u. 

 L. Panisset, Soc. Bio!., 68, 653 (1910). — 9) Nencki u. Sieber, Monatsh. Chem., 

 jo, 526 (1889). — 10) L. Selitrenny, Ebenda, p. 908; L. Zoja, Ztsch. physiol. 

 Chem., 23, 236.(1897). Th. Mörner, Ebenda, 22, 514 (1897). Rubner, 1. c. ~ 

 11) L. F. Rettger, Journ. Biol. Chem., 2, 71 (1906). C. A. Herter, Ebenda, i, 

 421 (1906). — 12) Nencki, Monatsh. Chem,, 10, 862 (1889). — 13) R. J. Petri 

 u. Maassen, Arb. Kais. Gesundh.amt, 8, 490 (1893). — 14) F. Blumenthal, Ztsch. 

 klin. Med., 28, 222 (1895). — 15) J. Wohlgemuth, Ztsch. physiol. Chem., 43, 469 

 (1905). Bürger, Arch. Hyg., 82, 201 (1914) fand jedoch nur SH^-Bildung aus Cystin, 

 kein Mercaptan. 



