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Neisser, 



Säfte bildet, und mit deren Hilfe er seine Existenz unter den für ihn 

 ungünstigen Verhältnissen des Tierkörpers behauptet. Die Feinheiten 

 der Kapselbildung und der „Gelenkbildung" sind im Grampräparat 

 nicht zu beobachten. Gleichwohl wird man auch ein solches zur Iden- 

 tifizierung machen. Im Hängetropfen aus der künstlichen Reinkultur 

 läßt sich die Sporenbildung, von R. Koch genau beschrieben, gut 

 beobachten. Es erscheinen im Innern der fädig angeordneten Stäb- 

 chen helle, stark lichtbrechende Körnchen, welche allmählich größer 

 werden und schheßlich zu einer Reihe von eiförmigen Sporen führen, 

 deren Träger, die eigentlichen Bazillen, verschwinden. In alten Kul- 

 turen sieht man nur noch diese Sporen. Für die Färbung der Milz- 

 brandspore sind fast alle Sporenfärbungen anwendbar, zumal das 

 Kleinsche Verfahren (Fig. 2). Einfach und zweckmäßig ist die Methode 

 von Wirtz (Fixieren mit Osmiumdämpfen, Färben mit Malachitgrün, 

 Erhitzen bis zur Dampfbildung, Nachfärben mit verdünntem Karbol- 

 fuchsin, Sporen grün, Bazillen rot). Auch eine Methode von Wald- 

 mann (Berl. tierärztl. Wochenschr. 1911, S. 257) ist einfach und gut. 



Ein Tuscheausstrich nach Gins (Zentralbl. f. Bakt., I. Abt., Orig., 

 1909, Bd. LH) von der Milzbrandreinkultur zeigt die Sporenbildung 

 sehr gut, aber die Gelenkpfannenbildung ist nur gut im gefärbten Präpa- 

 rat aus Gewebsausstrichen zu sehen. 



Zur Schnittfärbung der alkoholfixierten Gewebsstücke eignet 

 sich gut die Gram sehe Färbung mit Vorfärbung mit Pikrokarmin. 

 (Dünne Schnitte!) Man findet die Milzbrandbazillen im Gewebe in 

 sehr großen Mengen (s. Fig. 3). 



Wachstum. Abtötuug. 



Der Milzbrand gedeiht auch bei Sauerstoffabschluß, aber da nur 

 mangelhaft uiul ohne Sporenbildung. Bezüghch der Züchtungs- 

 temperaturen ist er wenig anspruchsvoll und wächst 

 zwischen 15 und 43*^. Bei 22" erfolgt sehr reichliche 

 Sporenbildung. Wachstum findet auf allen gewöhn- 

 lichen Nährsubstraten, ferner im Harn, zumal in 

 eiweißhaltigem, nur in geringem Maße in eiweißfreien 

 Medien statt. Gut ist er auf zerdrückten, mit Wasser 

 versetzten stärkehaltigen Samen, zumal auf Weizen, 

 aber auch auf neutralen oder leicht alkalischen In- 

 fusen von Heu, Stroh, Kartoffeln, auf Gurkensaft usw. 

 zu züchten. In Bouillon entsteht ein schleimiger, 

 flockiger Bodensatz, der beim Aufschütteln die Faden- 

 bildung erkennen läßt. 



Auf der Gelatineplatte entstehen Kolonien mit 

 welligem aufgelockertem Rande, in dem die fadenartige 

 Anordnung des Milzbrandbazillus zu prächtiger Locken- 

 bildung führt (sogenanntes Medusenhaupt). Die Ge- 

 latine wird allmäWich peptonisiert, und die Gelatine- 

 platte zeigt dann flache Dellen. Im Gelatinestich 

 findet im Verlauf einiger Tage langsame Verflüssigung 

 von oben her, in den tieferen Teilen des Stiches 

 flaschenbürstenartiges Wachstum statt (Fig. 4). Auf 

 der Oberfläche der Agarplatte zeigen die Kolonien 

 ebenfalls die Medusenhauptform; ein Klatschpräparat, nach Gram 



Fig. 4. Gelatine- 



sticlikultur des 



Milzbrand- 



bazilhis. 



