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entsprechenden Bildungen in Aktinomyzesherden. Diese Formverände- 

 rungen entstehen auch nach Einspritzung saprophytischer säurealkohol- ' 

 fester Bakterien (Lubarsch) und sogar nach intravenöser Einverleibung 

 abgetöteter boviner Tuberkelbazillen (Eastwood). 



Es handelt sich daher nicht um besondere Wuchsformen, sondern! 

 um Involutionsformen. Deshalb liegt auch kein Grund vor, die Tuberkel- 

 bazillen wegen dieser Bildungen von den übrigen Bakterien zu trennen 

 und sie in eine den Pilzen näherstehende Gruppe als „Mykobakterien" 

 einzureihen. 



Kulturelles Verhalten. 



Bei der Züchtung der Tuberkelbazillen ist zu beachten, daß sie 

 sauerstoffliebend sind und bei Bruttemperatur von etwa 37 — 38'^ am 

 besten gedeihen. Aus ersterem Grunde vermehren sie sich nur an der 

 Oberfläche der festen Nährböden; daher ist das ursprüngliche Platten- 

 verfahren zu ihrer Isolierung ungeeignet. Ferner wachsen sie sehr 

 langsam und erliegen deshalb leicht der Konkurrenz schnell wuchernder 

 Keime. Bei Zimmertemperatur vermehren sie sich überhaupt nicht. 

 Nur durch allmähliche Gewöhnung im Laufe von Jahren ist es gelungen, 

 auch bei Temperaturen zwischen 20 und 30*^ Wachstum zu erzielen 

 (C. Fraenkel). 



Zum Anlegen von Kulturen dient am besten erstarrtes 

 Rinderserum ohne oder mit Zusatz von 2^% Glyzerin. 



Als Ausgangspunkt eignen sich in erster Linie die jungen tuber- 

 kulösen Herde in der Milz eines Meerschweinchens etwa 4 Wochen nach 

 der Impfung mit tuberkulösen Massen unter die Haut. 



Die Milz wird dem getöteten (nicht verendeten) Tier steril entnommen, 

 einzelne Herde mit spitzen Scheren herausgeschnitten und mit einer starken (steri- 

 lisierten) Pinzette zerquetscht. Die breiige Masse wird mit einem krückenförmig 

 umgebogenen starken Platindraht auf die Oberfläche des Serums übertragen und 

 gut in sie eingerieben. Peinlich sauberes Arbeiten ist erforderlich, um jede Über- 

 tragung saprophytischer Keime zu vermeiden. 



Aus dem Auswurf lassen sich die Tuberkelbazillen ebenfalls züchten. 

 Man fischt eiterige Partikelchen heraus und befreit sie möglichst von 

 Begleitbakterien, indem man sie in mehreren Schalen mit sterilem 

 Wasser nacheinander auswäscht, und legt dann durch Bestreichen von 

 3 — 4 Serumröhrchen Verdünnungen an. Oder man behandelt den Aus- 

 wurf vor der Aussaat ^ — 1 Stunde lang mit 10 — 20% Antif orminlösung, 

 um die Begleitbakterien abzutöten (Uhlenhuth). 



Das Serum muß vor dem Eintrocknen geschützt werden, am 

 besten dadurch, daß man den (vorher abgeschnittenen und abgebrannten) 

 Wattebausch mit geschmolzenem Paraffin überschichtet. 



Die Kolonien der Tuberkelbazillen auf Serum erscheinen zunächst 

 als feinste graue oder weißliche mattglänzende Pünktchen. Später 

 bilden sie zusammenhängende trockene runzliche Beläge, die sich auf 

 das Kondenswasser ausbreiten und von hier auf die Glaswand über- 

 greifen können. Ältere Kulturrasen nehmen oft eine gelbliche Farbe an. 



Zur Isolierung der Tuberkelbazillen eignet sich auch der vor 

 Dorset empfohlene Eiernährboden sehr gut. 



Zur Weiterzüchtung der Reinkulturen kann man Glyzerinagaij 

 (s. S. 355) verwenden, auf dem die Kulturen ein sehr charakteristischetl 

 Aussehen annehmen (trockene Schuppen, gröbere Bröckel und Warzer 



