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Zur Ausführung der Indolprobe nach Kitasato- Salkowski fügt man zu 

 ca. lU ccm einer 4 — ötägigen Bouillon- oder Peptonwasserkultur 1 ccm einer frisch 

 bereiteten 0,01 %igen Kaliumnitritlösung sowie 1 ccm reinste Schwefelsäure (1 + '.i 

 Aq. dest.) hinzu. Bei Gegenwart von Indol entsteht nach ca. 5 Minuten Rot- 

 färbung. Sehr empfindlich ist die Probe bei Überschichten der mit H.,SO., versetzten 

 Kultur mit Kaliumnitritlösung (roter Ring); schwache oder verdeckte Rotfärbung 

 kann man durch Ausschütteln mit Amylalkohol deuthcher machen, da der Farb- 

 stoff in den Alkohol übergeht. 



Ein noch empfindlicheres Verfahren ist das von Ehrlich angegebene: Zu 

 10 ccm flüssiger Kultur werden 5 ccm einer Lösung von Paradimethylamido- 

 benzaldehyd 4 + 96%igen Alkohol 380 + konz. HCl 80, hieraiif 5 ccm einer ge- 

 sättigten wässerigen Kahumpersulfatlösung (als Oxydationsmittel) hinzugefügt 

 und gut durchgeschüttelt. Die Flüssigkeit färbt sich bei Gegenwart von Indol 

 nach 5 Minuteri rot. Auch hier kann man durch Ausschütteln des Farbstoffes durch 

 Amylalkohol die Reaktion noch verfeinern. 



Typhusbazillen geben die 



Proteinochromreaktion. 



Kulturen in 6%iger Peptonbouillon oder 3°oigem Peptonwasser werden mit Essig- 

 säure leicht angesäuert und dann tropfenweise mit frisch bereitetem, gesättigtem 

 Chlorwasser versetzt. Rotviolette Färbung (oder bei Überschichtung mitChlor- 

 wasser rotvioletter Ring an der Berührungsfläche) zeigt Proteinochrombildung an. 



Differenzierungsnährböden 



(s. auch Scheller, Methodik, S. 322). 



Hier wäre an erster Stelle das Verhalten des Typhusbazillus ver- 

 schiedenen Zuckerarten und Kohlehydraten gegenüber zu er- 

 wähnen. Während z. B. Bact. coli alle Zuckerarten — Traubenzucker, 

 Milchzucker, Lävulose, Galaktose — mit Säure und Gasbildung 

 vergärt, vermag der Typhusbazillus Traubenzucker, Lävulose, 

 Galaktose, Mannit nur unter Säurebildung — ohne Gasbildung 

 — zu zerlegen, den Milchzucker überhaupt nicht anzugreifen. 



Auf dem verschiedenen Verhalten des Typhusbazillus und der 

 übrigen Angehörigen der Typhus-Coli- Gruppe, besonders des Bact. coli, 

 dem Milchzucker gegenüber beruht die Anwendung einer ganzen 

 Reihe der gebräuchlichsten Differenzierungsnährböden, nämlich der 

 Milch, der Lackmusmolke, der Nährboden von Drigalski-Con- 

 radi sowie von Endo. 



Milch. 

 Während die sterilisierte Milch durch den Typhusbazillus im 

 Brutschrank bei 37" niemals zur Gerinnung gebracht wird, bewirkt 

 das Bact. coli meist schon nach 24 — 48 Stunden, bisweilen auch etwas 

 später, Gerinnung der Milch. Die Gerinnung beruht darauf, daß das 

 Bact. coli bei der Zerlegung des Milchzuckers reichliche Mengen von 

 Milchsäure produziert, die das Kasein zur Ausfällung bringt. Ebenso 

 wie der Typhusbazillus verhalten sich die Ruhrbazillen, der Bac. Para- 

 typhi A, der Bac. faecalis alcaligenes, Bac. enteritidis Gärtner u. a. 

 Der Bac. Paratyphi B und Bac. enteritidis Gärtner lassen*) die Milch 

 zunächst unverändert; nach ca. 14 Tagen wird sie leicht gelblich und 

 durchscheinend, infolge Peptonisierung des Milcheiweißes. Aus dem 

 Ausbleiben der Milchgerinnung kann man daher nicht auf den Typhus- 

 bazillus schließen, dagegen kann man von einem Bakterium, das die 



*) Ebenso verhalten sich Bac. suipestifer, die Bazillen der Psittakose, des 

 Mäusetyphus und die „Rattenbazillen". 



