Abdominaltyphus. 539 



IVElch zur Gerinnung bringt, mit Sicherheit sagen, daß es kein 

 Typhusbazillus ist. 



Lackmusmolke (nach Petruschky). 

 Die mit Typhusbazillen beimpften Röhrchen sind nach 24 bis 

 48 Stunden Bebrütung bei 37^ noch fast klar und durch die minimale 

 Säureproduktion eben rötHch violett gefärbt, während die meisten Coli- 

 und coliähnlichen Arten die Molke innerhalb dieser Zeit durch eine starke 

 Milchsäurebildung intensiv rot färben und stark trüben. Da der Typhus- 

 bazillus den Milchzucker nicht angreift, so ist die leichte Säurebildung 

 auf die Zerlegung anderer noch im Milchnährboden vorhandener Zucker- 

 arten zurückzuführen. 



Die Bazillen der Paratyphus B- und Gärtner- Gruppe erzeugen zunächst 

 eine deutliche Rot\äolettfärbung mit leichter Trübung; jedoch schlägt diese Rot- 

 färbung nach durchschnittlich 3 — 4 Tagen unter Häutchenbildung in ein tiefes 

 Veilchenblau um und die Trübung versch\vändet. Der Paratyphus A unter- 

 scheidet sich von dieser Gruppe dadurch, daß er in der Lackmusmolke unter leichter 

 Trübung infolge dauernder Säureproduktion eine rötliche bis dunkelrote Färbung 

 erzeugt und den Umschlag in Blau vermissen läßt. Der Bac. f aecalis alcali genes 

 färbt die Molke schon nach 24 Stunden unter leichter Trübung intensiv blau, während 

 die Ruhrbazillen ebenso wie die Tj^phusbazillen Molke ohne Trübung leicht röten. 

 Beim Ansetzen der Proben muß möglichst die gleiche Kulturmenge in alle 

 Röhrchen eingesät werden und der Ausfall der Farbenreaktion soll durch Vergleich 

 mit einem unbeimpften, ebenso lange bebrüteten Röhrchen kontrolliert werden. 



Lackmusnutroseagar (nach v. Drigalski-Conradi) 

 Der übliche Peptonnähragar erhält einen Zusatz von 1% Nu- 

 trose (Kasein-Natron) Höchst, um den Eiweisgehait des Nährbodens 

 zu erhöhen und eine Reaktionsdifferenz der Typhuskolonien hervor- 

 zurufen, ferner Milchzucker als vergärbaren Reaktionskörper sowie 

 Lakniuslösung nach Kübel und Tiemann als Indikator. 



Nach der Vorschrift von Drigalski-Conradi werden dem Nährboden 

 noch 10 ccm einer 0,1% igen frisch bereiteten wässerigen und filtrierten Lösung 

 von Kristallviolett zugesetzt. Der Zusatz von Kristallviolett geschieht, um einen 

 Teil der Begleitbakterien, besonders die säiu-ebildenden Kokkenarten, die im Darm 

 häufig vorkommen, durch Wachstumshemmung auszuschalten. 



Besäte Platten mindestens Vo Stunde staubgeschützt offen stehen 

 lassen, dann mit Deckel nach unten bei 37" bebrüten. Nach 14—24 Stun- 

 den untersuchen. Typhuskolonie 1—3 mm groß, blau, glasig, 

 nicht doppelt konturiert, tautropfenähnlich, ebenso Paratyphus. 



Coli- Kolonie 2—6 mm leuchtend rot, nicht durchsichtig (s. 

 Fig. 2). Die Colibakterien verändern vor allem den Zucker, erzeugen 

 Milchsäure und bilden daher rote Kolonien, die dick und wenig 

 durchsichtig sind. Die Typhusbazillen stellen aus der Nutrose alka- 

 lische Stoff Wechselprodukte her und bilden kleine blaue, glasig durch- 

 sichtige, eigentümUch glänzende, tautropfenähnhche, zarte Kolonien. 



Allerdings wachsen auch noch andere typhusähnliche Bakterien- 

 arten der Paratyphus- und Gärtner-Gruppe auf dem Nährboden. Jedoch 

 scheinen diese Kolonien gewöhnlich saftiger und weniger durchsichtig 

 und häufig — bei alten Kulturen — mit einem Schlcimwall umgeben. 

 Trotzdem gelingt es dem geübten Auge meist, die verdächtigen Kolo- 

 nien herauszufinden, um sie weiter differentialdiagnostischen Prüfungen 

 zu unterziehen. Jedenfalls bedeutet dieser Nährboden oine wesent- 

 liche Erleichterung der Typhusdiagnose. Der Nährboden hat aber 



