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banden; sehr häufig finden sich mehr oder minder zahlreiche Blut- 

 austritte unter den serösen Häuten, insbesondere an Pleura und Epikard. 

 Der Erreger (Sp. Obermeieri bei der europäischen Form, 

 Sp. Duttoni beim zentralafrikanischen Zeckenfieber, Sp. berbera bei 

 der nordafrikanischen Form, Sp. Novy bei der nordamerikanischen 

 und Sp. Carteri bei der ostindischen Form) zeigt bei den einzelnen 

 genannten Formen zum Teil schon morphologische Unterschiede, die 

 aber zu inkonstant sind, um darauf allein eine Untersuchung der ein- 

 zelnen Arten zu begründen. Die Länge der Rekurrensspirochäten 

 wechselt zwischen 10—30 n, die größte Dicke beträgt etwa V2 /*; <lie 

 Zahl der Windungen beträgt meist 6 — 8, die Windungen sind ziem- 

 lich abgeflacht, die Enden deutlich zugespitzt. Sowohl an den Enden 

 wie in periticher Anordnung finden sich äußerst feine Geißelfäden 

 (C. Fraenkel). In späteren Stadien der Krankheit, besonders gegen 

 Ende des Anfalls sieht man die Spirochäten häufig in Knäuel, ver- 

 flochten; es handelt sich hier um eine Immunitätsreaktion, die als 

 Agglomeration bezeichnet wird und auch in vitro unter dem Einfluß 

 von spezifischen Immunserum nachgewiesen werden kann. Für die 

 Auffindung der Spirochäten im Krankenblut kommt es hauptsächlich 

 darauf an, auf der Höhe des Fiebers zu untersuchen, weil nur dann 

 einigermaßen sicher auf einen reichlichen Befund gerechnet werden 

 kann, während beim Absinken des Fiebers die Spirochäten im kreisen- 

 den Blute sehr spärlich werden und in den fieberfreien Intervallen 

 überhaupt nur ganz ausnahmsweise vereinzelte Exemplare im Blute 

 angetroffen werden. Im lebenden Zustande sind die Spirochäten nicht 

 ganz leicht zu sehen ; doch wird man auf ihr Vorhandensein durch 

 das Verhalten der benachbarten roten Blutkörperchen aufmerksam ge- 

 macht, welche durch den Anstoß der lebhaft beweglichen Parasiten 

 ruckweise Ortsveränderungen ausführen. Am schönsten gelingt der 

 Nachweis der lebenden Spirochäten bei Dunkelfeldbeleuchtung. In ge- 

 trockneten Ausstrichpräparaten gibt das Tuscheverfahren nach Burri 

 oder die Färbung nach Giemsa die besten Resultate; mit den ge- 

 wöhnlichen wässerigen Lösungen der Anilinfarbstoffe fällt die Färbung 

 nur schwach aus; zur ersten einfachen Orientierung ist folgendes 

 Schnellfärbeverfahren (nach H. Bitter) empfehlenswert: Das lufttrockene 

 Ausstrichpräparat wird mit 96%igem Alkohol einige Sekunden be- 

 handelt und nach Ablaufenlassen der noch anhaftende Alkohol in der 

 Flamme abgebrannt; hierauf folgt Färbung mit konzentrierter Ziehl- 

 scher Karbolfuchsinlösung unter leichtem Erwärmen während etwa 

 10 Sekunden; die Spirochäten erweisen sich als sehr intensiv gefärbt. 

 Zum Nachweis spärlicher Exemplare eignet sich die Färbung im 

 „dicken Tropfen" (vgl. bei Malaria). 



Die künstliche Kultur der Rekurrensspirochäten ist bisher in 

 einer praktisch anwendbaren Form noch nicht gelungen. Im mensch- 

 lichen Blute, bei Luftabschluß aufbewahrt, erhalten sich die Spiro- 

 chäten bei Bruttemperatur bis zu 20 Stunden, bei Zimmertemperatur 

 bis zu 14 Tagen lebendig. 



Im Tierversuch gelingt die Übertragung durch Verimpfung 

 spirochätenhaltigen Blutes auf Affen und Nagetiere, wobei jedoch 

 zwischen den verschiedenen Arten der Erreger aus verschiedenen Erd- 

 teilen charakteristische Differenzen bestehen: die Sp. Obermeieri 

 läßt sich auf Mäuse und Ratten nicht direkt, sondern erst nach voran- 



