BACILLUS TYPIIOSUS. 147 



chlorhydrique sur le lactose, à chaud ; le Colibacille trouble al)on- 

 tlammenl et donne une forte réaction acide ; le 2?ar///«s /œra//s a/ca- 

 ligenes Ivouhle en vin^t-quatre heures et donne en quarante-huit heures 

 une réaction alcaline. 



Pour remplacer ce petit-lait tournesolé, Grimbert et Legros (1) pro- 

 posent un milieu lactose plus simple et plus sensible. On fait bouillir 

 dans une capsule de porcelaine : 



Lactose pur 2 sjrammes. 



Peptone 06^50 



Eau distillée 100 cent, cubes. 



et Ton y ajoute une petite (juantité de carbonate de chaux pur. On filtre 

 au bout de cincj minutes et Ton s'assure, par la teinture de tournesol, 

 que le liquide a une réaction neutre et non acide ou alcaline. On répartit 

 (lans des tubes à essai et Ton stérilise à 110° pendant un quart d'heure. 

 Après refroidissement, on ajoute 0",5 ou 1 centimètre cul)e de teinture 

 de tournesol stérilisée. Dans ce milieu, le Bacille tifphiqae se développe 

 bien sans changer la nuance ; le Colibacille la fait rapidement virer 

 au rouge. 



Toutefois, d'après Sanarelli, des Colibacilles provenant de l'intestin 

 se développeraient sur ces milieux tournesolés sans les faire virer au 

 rouge, et Silvestrini (2) aurait vu un Bacille typhiqiie, vrai d'après lui, 

 retiré de la rate d'un typhiijue, roug-ir la g-élose bleue ; le lactose peut 

 souvent renfermer des traces de glucose qui expliqueraient ces dif- 

 férences. 



Méthode de Ramond. — Ramond (3) conseille l'emploi de rubine acide. 

 A 5 ou G centimètres cubes de 

 gélose lactosée à 4 p. 100 fondue 

 vers 70°-80", on ajoute de la solu- ^-as-©^ 



tion de rubine jusqu'à nuance 4^'*^^^ 



rouge-cerise, puis 2 gouttes de ; / 



solution aqueuse saturée de car- _ X-^â^jt^ 

 bonate de soude qui décolore très 

 vite le milieu. Il se fait, sous l'in- 



lluence de l'alcali, une précipita- Fig. 36. — Colonies de Bacille lyphiqueet 

 tion de sels terreux qui oblige de Colibacille sur gélatine de Ramond 



à fdtrer. On stérilise à 105" pen- (^'^'"'^^ G^"^'*^)- 

 dant cinq minutes; le milieu doit 



être incolore. Le Bacille d'Ebert/i, ensemencé sur ce milieu, s'y cultive 

 sans produire de modification; le Colibacille, au contraire, fait appa- 

 raître une coloration rouge intense. En ensemençant en strie une très 

 petite quantité d'un mélange des deux espèces, de manière à obtenir des 

 colonies isolées, celles du Colibacille se teignent en rosé, celles du Ba- 

 cille d'Eber t h ves,lenl incoloreset transparentes. La gélatine colorée par 

 le même procédé peut servir à faire des plaques où les colonies se 

 différencient de la même manière (fig. 36). 11 faut cependant se 



(1) Grimbert et Legros, Sur un milieu lactose destiné à remplacer le petit-lait tour- 

 nesolé de Petruchsky [Soc. de BioL, 26 octobre 1901). 



(2) Silvestrini, Rivistu (jen. italiana di clinicamedica, )i^92. 



(3) Kamonu, Nou\eau milieu pouvant servir à différencier le B. d'Eberth du Bacte- 

 rium coli {Soc.de BioL, 1896, n» 28). 



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