300 Sechstes Kapitel: Zucker und Kohlenhydrate bei Pilzen und Bacterien. 



16 stündigem Verweilen in Chloroformdampf. Die beiden ersten gaben 15,25 g 

 Trehalose resp. 13,95 g Mannit. Bei der dritten Portion hatten sich 452 ccm 

 eines dunkelbraunen Saftes gebildet, ebenso waren die Pilze dunkelbraun 

 geworden. Beides zusammen gab 14,55 g Trehalose und einige Dezigramm 

 Mannit. 



Inwiefern Enzyme bei diesen Vorgängen im Spiele sind, harrt noch der 

 Entscheidung (1). Sicher ist aber bei der einfachen Spaltung der Trehalose 

 in Traubenzucker ein Enzym im Spiel, welches Bourquelot (2) bei Pilzen 

 weit verbreitet nachwies. Die Trehalase aus Aspergillus benützte Harang 

 erfolgreich als Hilfsmittel bei der quantitativen Bestimmung der Trehalose, 

 indem er die polarimetrische Beobachtung vor und nach der Spaltung 

 mit Trehalase verghch. Soll im weiteren Mannit entstehen, so muß der 

 Traubenzucker zunächst eine Umlagerung zu Mannose (oder Fructose) 

 erfahren, aus der durch Reduktion Mannit entsteht. 



Kohlenhydrate ; Glykogen. 



Stärke und stärkeähnliche Kohlenhydrate werden in Pilzen wohl 

 kaum vorkommen. Belzung(3) hatte für keimende Mutterkornsclerotien 

 und für Coprinus Vorkommen von Leukoplasten und Amylumkörnern 

 angegeben, doch dürften in Hinblick auf Berichtigungen in der letzten 

 Arbeit Belzungs diese Angaben am besten zurückgezogen werden. 

 Einen interessanten Fall des Vorkommens Jod bläuender Kohlenhydrate 

 bei Pilzen hat Bourquelot (4) bei Boletus pachypus Fr. aufgefunden. 

 Die fragliche Substanz läßt sich aus dem wässerigen Dekokt des Pilzes 

 mit Alkohol fällen, gibt bei der Hydrolyse reduzierenden Zucker, und 

 ist im übrigen noch zu erforschen; besonders ist nicht sichergestellt, 

 ob sie dem Hypheninhalt oder der Zellmembran entstammt. 



Glykogen (5). Dieses für tierische Organismen charakteristische 

 Reservekohlenhydrat spielt auch bei den Pilzen eine überaus bedeutungs- 

 volle Rolle. Es ist hoch wahrscheinlich, daß das Pilzglykogen mit dem 

 Leberglykogen wirklich identisch ist, und ebenso, daß alle Pilze dasselbe 

 Glykogen enthalten. Schon 1868 konnte Kühne (6) in dem Schleimpilz 

 Fuligo varians Glykogen nachweisen, und Behrend sowie Reinke und 

 Rodewald behaupteten dessen Identität mit dem Glykogen der Säuge- 

 tierleber (7); das Plasmodium von Fuligo enthält nach Reinke 4,7% Gly- 

 kogen. Im „Epiplasma" der Asci der Discomyceten fand Errera(8), 

 daß die stark lichtbrechende Vacuolensubstanz die rotbraune Jodreaktion 

 des Glykogens zeigt. Alsbald wurde von demselben Forscher Glykogen 

 auch in Hefe, in Pilobolus und anderen Phycomyceten, sodann bei vielen 

 Basidiomyceten nachgewiesen. Aus Massenkulturen von Phycomyces, 

 sowie aus mehreren Asco- und Basidiomyceten wurde nach der Methode 



1) Vgl. J. Zellner, Monatsh. Chem., 27, 281 (1906). — 2) Bourquelot, 

 Bull. Soc. Mycol., 9, 189 (1893). — 3) E. Belzung, Bull. Soc Botan. (2), 8, 199 

 (1886); Journ. Pharm, et Chira. (1890), p. 283; Jouru. de Botan. (1892), p. 456. — 

 4) Bourquelot, Bull. Soc. Mycol., 7, 155 (1891); Journ. Pharm, et Chim., 24, Nr. 5 

 (1891). — 5) Bibliographie: B. Heinze, Zentr. Bakt. II, 12, 43 (1904). L. Errera, 

 Recueil Instit. Botan. Bruxelles, / (1905). — 6) W. Kühne, Lehrb. d. physiol. 

 Chem. (1868), p. 334. — 7) Behrend, zit. bei Krukenberg, Vergl. physiol. Stud., 

 2, 55 (1880). Reinke u. Rodewald, Studien üb. d. Protoplasma (1881), p. 34, 54, 

 169. — 8) L. Errera, L'Epiplasme des Ascomycfetes (Bruxelles 1882); Bull. Ac. 

 Roy. Bruxell. (3), 4 (1882); 8, 602 (1884); Botan. Ztg. (1886), p. 316. Krafkoff, 

 Script, botan. hört. Petropol., j, 17. 



