302 Sechstes Kapitel: Zucker und Kohlenhydrate bei Pilzen und Bacterien. 



Leberglykogen. Nach Bottazzi(1) zeigt Glykogen bei der elektrischen 

 Überführung anodische Wanderung und ist in schwach saurer Lösung 

 streng isoelektrisch. Viscosität und Konzentration nehmen nicht in 

 stetigem Verhältnis zu. Viel Mühe hat man auf die kryoskopische Be- 

 stimmung des Molekulargewichtes verwendet, jedoch sehr vei^schiedene 

 Zahlen erhalten. Aber auch die Untersuchung der Chloracetylderivate 

 zeigte, daß das Molekulargewicht ein sehr hohes sein muß (2). 



Die empirische Zusammensetzung des Glykogens wird mit [CgHioOsJn 

 angegeben. Das Endprodukt der Hydrolyse ist Traubenzucker. Die 

 intermediär entstehenden Hydratationsstufen sind noch unzureichend be- 

 kannt. Knaffl-Lenz (1. c.) erhielt ein dextrinartiges Produkt von sehr 

 schwachem Reduktionsvermögen, rechtsdrehend und in 50%igem Alkohol 

 viel leichter löslich als Glykogen bei der Verseifung von Chloracetyl- 

 Glykogen, ebenso berichtet Z. Gruzewska (3) über dextrinartige Körper, 

 die keine Jodreaktion mehr gaben, aus der HgOg-Hydrolyse des Gly- 

 kogens. Glykogenspaltendes Enzym, Glykogenase, ist in tierischen Or- 

 ganen und Sekreten reichlich zugegen (4) und auch in Hefezellen als 

 Endoenzym (5) nachgewiesen und wirkt zweifellos überall bei der Glykogen- 

 spaltung mit, wo dieses Kohlenhydrat vorkommt. Doch bedarf die gegen- 

 seitige Stellung der Diastase und Glykogenase noch einer Klärung. 

 Während Malzdiastase auf Glykogen nur sehr langsam einwirkt, hydro- 

 lysiert Pankreasferment Glykogen fast ebenso schnell wie Stärke (6). 

 Nach Musculus und Mering soll das Endprodukt der fermentativen 

 Spaltung des Glykogens, wie bei Stärke, Maltose sein (7), doch konnte 

 Cremer Maltose nicht finden und hielt Isomaltose für ein Produkt des 

 Glykogenabbaues, was von Osborne und Zobel (8) wieder bestritten 

 wurde. Hier haben also noch weitere Untersuchungen das Verhältnis 

 des Glykogens, der „tierischen Stärke", wie es auch genannt wurde, zum 

 pflanzlichen Amylum endgültig festzustellen. 



Die rotbraune Reaktion des Glykogens mit JodjodkaUum ist das wich- 

 tigste Hilfsmittel beim Nachweise von Glykogen in Zellen und Geweben. 

 Doch ist diese Färbung bei Gegenwart sehr geringer Glykogenmengen 

 unzuverlässig, und negative Befunde beweisen nicht Abwesenheit von 

 Glykogen. Empfindhcher soll die Modifikation der Jodprobe unter Anwendung 

 von Ferricyankahum nach Kato (9) sein. 



Vom Epiplasma der Asci kannten schon Tulasne und De Bary diese 

 Jodreaktion. Die Jodreaktion des Glykogens verblaßt ebenso wie die Jod- 

 stärkereaktion beim Erwärmen und kehrt beim Erkalten wieder. Speziell 

 die Jodreaktion vsoirde vielfach benutzt, um das Auftreten und Verschwinden 

 von Glykogen bei Pilzen zu studieren, und es hat sich in allen Fällen unzwei- 

 deutig der Charakter des Glykogens als Reservestoff herausgestellt. Errera 

 (1. c.) studierte eine Reihe von Hutpilzen in verschiedenen Lebensstadien 



1) F. BOTTAZZI, Atti Accad. Line. Rom. (5), i8, II, 87 (1909); Pflüg. Arch., 

 US, 359 (1906). — 2) E. v. Knaffl-Lenz, Ztsch. physiol. Chem., 46, 293 (1905). 

 Skraup, Monatsh. Chem., 26, 1415 (1905). Die colorimetrische Methode von Wacker, 

 Ber. Chem. Ges., 42, 2679 (1909) würde viel geringere Werte anzeigen. — 3) Z. 

 Gruzewska, Bull. Soc. Chim. (4), 7, 744 (1910); Soc. ßiol., 68, 274 (1910). — 

 4) F. Pick, Hofmeisters Beitr., j, IV— VI (1902). Mä.cleod u. Pearce, Amer. 

 Journ. of Physiol., 25, 255 (1910). — 5) Cremer, 1. c. E. Buchner u. Rapp, Ber. 

 Chem. Ges., j/, 214 (1898). — 6) Cremer, 1. c.; Ztsch. Biol., j/, 183 (1894). Ch. 

 PmuccHE, Soc. Biol., 59, 260, 263 (1905). — 7) Musculus u. Mering, Ztsch. 

 physiol. Chem., 2, 413. — 8) W. A. Osborne n. S. Zobel, Journ. of Physiol., 29, 

 1 (1903). — 9) K. Kato, Pflüg. Arch., 127, 125 (1909). Bleibtreu, Ebenda, p. 118. 



