§ 2. Verarbeitung von Hexosen und Pen tosen. 315 



verarbeitet werden wie Glucose, aber Schleimsäure und Zuckersäure 

 nicht mehr. Die Alkoholbildung ist auf Gluconsäure geringer als auf Glucose. 

 Übrigens heben auch Harden und Walpole hervor, daß die Alkoholbildung 

 auf Glucose von Mannitkulturen um das Doppelte übertroffen wird, offenbar 

 weil die wirksame Gruppe CHgOH-CHOH im Mannit zweimal vorhanden 

 ist. Das Sorbosebacterium bildet nach Crismer(I) Hexonsäure nur auf 

 Glucosenährboden; Ketosen, auch Sorbose, werden verbraucht ohne Auf- 

 treten charakteristischer Produkte. Die synthetisch gewonnenen Hexosen 

 sind bisher für Bacterien nicht geprüft worden, die vorhandenen Ver- 

 suche (2) beziehen sich nur auf Hefen. Reichhche Zuckerzufuhr lenkt unter 

 allen Verhältnissen den Stoffwechsel in andere Bahnen, als auf zucker- 

 armem Substrat, und verschiedene Erscheinungen, wie Rücktreten der 

 NHg-Bildung, Indolbildung usw., zeigen an, daß die Spaltung von Eiweiß- 

 körpern bei reichhcher Zuckerzufuhr sehr vermindert wird (3). Angebhch 

 soll auch Lecithindarreichung zur Zuckerverarbeitung bei Bact. coli in 

 gewissen Beziehungen stehen (4). Bact. coli spaltet nach Euler (5) Glucose- 

 Phosphorsäureester. 



Bei der Darreichung von Pentosen und Methylpentosen (1-Arabinose, 

 1-Xylose und Rhamnose) konnte man zwar bei Aspergillus und verschiedenen 

 Heferassen (6) leichte Assimilierbarkeit, jedoch niemals unter Bildung von 

 Alkohol beobachten. Der Soorpilz verarbeitet wohl 1-Xylose, nicht aber 

 Arabinose (7), während eine von Hanzawa (8) untersuchte Rhizopus-Art 

 Xylose nicht ausnützt. Für Bacterien wirken Pentosen allgemein als günstige 

 Kohlenstoffnahrung, während Glucoheptose und Quercit von Segin (9) als 

 unverwendbar gefunden wurden. Fäulnisbacterien verarbeiten, wie Sal- 

 KOWSKi(IO), Bendix(11) und Ebstein (12) fanden, Pentosen sehr leicht; 

 dies ist für die Zersetzung der Nucleine, welche Pentosen enthalten, von 

 Wichtigkeit. Aber auch im Boden finden sich unter den Zersetzungs- 

 produkten der Pflanzen pentosenhaltige Materialien in den pentosanhaltigen 

 Zellmembranen, welche von Bodenbacterien gleichfalls verarbeitet werden. 

 Stoklasa(13) gab an, daß Xylose für den AKnitbacillus die beste Kohlen- 

 stoffnahrung sei. Nach Frankland und Mac Gregor (14) wird Arabinose 

 durch Bac. ethaceticus verarbeitet, Grimbert(15) fand Arabinose und 

 Xyloseverarbeitung beim FRiEDLÄNDERschen Bacillus; Bact. coli ist nach 

 Chantemesse und Vidal(16) und Pere (17) mit Arabinose und Rhamnose 

 ernährbar; Täte (18) konstatierte für einen Mikroben von reifen Birnen 

 Verarbeitung von Rhamnose, Henneberg(19) Arabinoseernährung bei Bact. 



1) L. Crismer, Botan. Zentr., 104, 90 (1905). Sorbose: Th. Bokorny, Cheni.- 

 Ztg., 34, 220(1910). - 2) E. Fischer u. H. Thierfelder, Ber. Chem. Ges. (1894), 

 p. 2031. — 3) Vgl. A. J. Kendall u. Farmer, Journ. of Biol. Chem., 12, 13, 19; 

 /j, 63 (1912). Böhnke, Arch. Hyg., 74, 81 (1911). — 4) H. A. Epstein u. Olsän, 

 Journ. of Biol. Chem., //, 313 (1912). — 5) H. Euler, Ztsch. physiol. Chem., 79, 

 375 (1912). — 6) BoKORNY, Dinglers polytechn. Journ., 303, 115(1897); Chem.-Ztg., 

 34, 220 (1910). Schöne u. Tollens, Journ. f. Landwirtsch., 49, 29 (1901). Cross 

 u, Tollens, Ebenda, 59, 419 (1911). — 7) P. Lindner, Wochi?chr. f. Brauerei, 28, 

 61 (1911). H. Euler u. Meyer, Ztsch. physiol. Chem., 80, 247 (1912). — 8) J. 

 Hanzawa, Mycol. Zentr., /, 76 (1912). — 9) A. Segin, Zentr. Bakt., II, 12, 397 

 (19Ö4). — 10) E. Salkowski, Ztsch. physiol. Chem., 30, 478 (1900). — 11) Bendix, 

 Ztsch. f. diät. u. physik. Therapie (1899), VII, j. — 12) E. Ebstein, Ztsch. physiol. 

 Chem., 36, 478 (1902). — 13) J. Stoklasa, Zentr. Bakt. II, 4, 817 (1898); 5. 351 

 (1899). - 14) P. F. Frankland u. J. Mac Gregor, Jouru. Chem. Soc. (1892) 

 p. 737. — 15) L. Grimbert, C r. Soc. Biol. (1896) p. 191; Ann. In,st. Pasteur, 9, 

 840 (1895). — 16) Chantemesse u. Widal, Koch Jahresber. (1892), p. 80. — 17) A. 

 Pere, Ann. Inst. Pasteur (1898), p. 63. — 18) G. Täte, Journ. Amer. Chem. Soc, 

 63, 1263; Chem. Zentr. (1893), //, 1006. — 19) W. Henneberg, Zentr. Baiit. (1898), p. 20. 



