322 Siebentes Kapitel: Die Resorption von Zucker u. Kohlenhydraten durch Pilze. 



kolbens auftretenden öligen Streifen und Tropfen, welche durch den wieder 

 kondensierten Alkohol entstehen, eine brauchbare Reaktion auf Alkohol. 

 Hansen und Klöcker(1) fanden diese Probe sehr zweckentsprechend und 

 empfindhch; die Grenze des Nachweises geht bis zu 0,002 Volumprozent 

 herab; Aceton gibt die Probe gleichfalls, jedoch nicht Acetaldehyd und 

 Essigsäure. Gewöhnlich benützt man zur Aufsuchung des Äthylalkohols 

 in den ersten Teilen des Destillates die Jodoformprobe von Lieben (2): 

 Die Probe wird mit Jod und NagCOg (Vermeidung von Alkahüberschuß!) 

 vorsichtig erwärmt, worauf eine schwefelgelbe Trübung durch das charak- 

 teristisch riechende, mikroskopische hexagonale Kryställchen bildende Jodo- 

 form CJgH auftritt. Beim Schütteln von alkoholhaltigen Lösungen mit 

 Benzoylchlorid und Natronlauge entsteht der charakteristisch riechende 

 Benzoesäureäthylester (3). Weitere Methoden zum Nachweise des Äthyl- 

 alkohols beruhen auf der Überführung in Acetaldehyd durch Oxydations- 

 mittel und Erkennung des Aldehyds durch die Rosanilindisulfitprobe (4). 

 Farbenreaktionen auf Äthylalkohol sind mehrfach empfohlen. Verdünnte 

 Methylviolettlösung mit Alkalipolysulfid hefert bei Alkoholgegenwart eine 

 violettrote Färbung [v. Bittö (5)]. 50% HNO3 auf 90% Alkohol geschichtet, 

 gibt einen grünen Farbenring (6). Farbenreaktionen treten bei Gegenwart 

 von Alkohol (aber auch von Oxysäuren) ein mit alkalischer Diazobenzol- 

 sulfonsäure sowie mit Sulfanilsäure + NaNOg (7). Bei hoher Verdünnung 

 findet sich fast der gesamte Alkohol im ersten Viertel des Destillates (8). 

 Gewöhnhch bestimmt man den Alkohol des Destillates aräometrisch, doch 

 kann man den Alkoholgehalt rasch und genau auch durch das Capillari- 

 meter bestimmen. Colorimetrische Methoden zur Alkoholbestimmung be- 

 ruhen z. B. auf der Fuchsindisulfitprobe nach vorheriger Überführung in 

 Aldehyd (9), auf der Benutzung der Grünfärbung mit Chromat (10); andere 

 Methoden basieren auf derÄthoxylbestimmung(ll) oder auf der Überführung 

 in Essigsäure (12). 



Bekannt ist der hemmende Einfluß, welchen höhere Alkoholkonzen- 

 trationen der Gärflüssigkeit auf den Fortgang der Gärung entfalten. Be- 

 sonders hat sich Mucorhefe gegen Alkohol empfindhch gezeigt. Hier hegt 

 die SchädUchkeitsgrenze nach Fitz bei 3,5—4% Alkohol und die Gärung 

 von Rhizopus nigricans sistiert schon bei 1,3% Alkohol (13), Hefe zeigt 

 nach Kochmann (1 4) bei ^/aoo— ^/soo Alkoholgehalt eine Förderung der Gärung, 

 welche auf einer Begünstigung der Fermentproduktion beruhen dürfte. 

 Bis zu 3% wird die Reproduktion der Hefe nicht behindert; 4,2% Alkohol 



1) A. Hansen, C. r. Carlsberg, /, 175 (1881). A. Klöcker, Ebenda, 10, 99 

 (1911). — 2) Lieben, Ber. Chem. Ges., 2, 549 (1869). — 3) Berthelot, Compt. 

 rend., 73, 496. Palladin, Ber. Botan. Ges. (1906), p. 276. — 4) E, de Stoecklin, 

 Compt. reud., 150, 43 (1910). G. Deniges, Bull. Soc. Chim. (4), 7, 951 (1910). — 

 5) B. V. Bittö, Chera.-Ztg., 17, 611. — 6) J. KossA, Pharm. Zentr. Halle, 46, 893 

 (1905). — 7) L. Rosenthaler, Chem.-Ztg., 36, 830 (1912). — 8) Nicloux u. 

 Bauduer, Bull. Soc. Chim. (3), 17, 424, 455 (1897). — 9) Argenson, Ebenda, 27, 

 1000 (1902). — 10) H. Agulhon, Ebenda (4), 9, 881 (1911). — 11) Stritar, 

 Ztsch. physiol. Chem., 50, 22 (1906). — 12) Bourcart, Ztsch. analyt. Chem., 29, 

 608 (1890). Sonst: ß. Gaunt, Ztsch. analyt. Chem., 44, 106 (1905), kryoskopisch ; 

 Landsberg, Ztsch. physiol. Cham., 41, 506 ^1904). Kapeller, Ost.-ungar. Ztsch. 

 Zuckerindustr., 38, 817 (1909). Herzog, Lieb. Ann., 351, 263 (1907). Pringsheim, 

 Abderhaldens biochem. Arb.meth., 2, 1 (1909). A. Baudrexel, Ztsch. Spiritusindustr., 

 35, 379 (1912). Darstellung reinsten Äthylalkohols: Winkler, Ber. Chem. Ges., j5, 

 3612 (1905). — 13) Pasteur, Etudes sur la bifere (1876), p. 133. Brefeld, Landw. 

 Jahrb., 5, 305 (1876). Hansen, Med. Carlsberg Labor., 2, 160 (1888). Lesage, Ann. 

 .Sei. Nat. (7), 3, 151 (1897). — 14) M. Kochmann, Biochem. Ztsch., 16, 391 (1909). 



