342 Siebentes Kapitel: Die Resorption von Zucker u. Kohlenhydraten durch Pilze. 



Salicylsäure anstellen (1). Behrens (2) schlug vor, die charakteristischen 

 Sphärite des schwerlöslichen Yttriumlactates zum Milchsäurenachweis zu 

 benützen. Man schüttelt die angesäuerte Probe mit Äther aus, dunstet 

 den Äther ab, neutralisiert den Rückstand mit NHg und setzt etwas 

 Yttriumsalzlösung zu. Vournasos (3) führt die Milchsäure mit Jod und 

 Kalilauge in Jodoform über und weist letzteres durch die Isonitrilbildung 

 mit Methylamin nach, wobei man nach Croner(4) statt Methylamin 

 Anilin benützen kann, um das charakteristisch riechende Isocyanphenyl 

 zu erhalten. Sonst sind noch als Erkennungsproben angewendet die 

 Reduktion von Ammonmolybdat und Chromat (5); ferner die Spaltung 

 mit H2SO4 unter Bildung von Acetaldehyd und der Nachweis des letzteren 

 durch die Farbenreaktionen mit Nitroprussidnatrium und Piperidin, mit 

 Guajacol oder mit Codein (6). Mit Alkali erhitzt gibt Milchsäure Glieder 

 der Essigsäurereihe und höhere ungesättigte Fettsäuren (7). Wasserstoff- 

 peroxyd verwandelt Milchsäure vollständig in Essigsäure (8). 



Die Isolierung der Milchsäure erfolgt gewöhnlich aus dem Alkohol- 

 extrakt des Untersuchungsmateriales, indem man dieses eindunstet, sodann 

 nach vorherigem Ansäuern mit Äther extrahiert, und die Herstellung des 

 Zinksalzes aus dem ätherlöslichen Anteil vornimmt. In wässeriger Lösung 

 ist das Zinksalz der d-Säure linksdrehend, das Zinksalz der 1-Milchsäure 

 hingegen rechtsdrehend (9). Ferner hat man die Bildung von Acetaldehyd 

 bei der Oxydation von Milchsäure und die quantitative Bestimmung 

 des Aldehyds herangezogen (10). Im Licht zerfällt bekannthch Milchsäure 

 gleichfalls in Acetaldehyd und Kohlensäure, und auch Brenztraubensäure 

 ist unter den Spaltungsprodukten. In allen Fällen läßt sich Acetaldehyd 

 qualitativ leicht nachweisen, indem man als Reagens Filtrierpapierstreifen 

 benützt, die erst mit 10% Nitroprussidnatrium getränkt und dann mit 

 5 % Piperazin befeuchtet wurden. Acetaldehyd gibt damit eine blau- 

 violette Färbung, die sonst nur noch mit Propionaldehyd erzielbar ist (11). 



Als Material der Milchsäuregärung sind allgemein die vier gärungs- 

 fähigen Hexosen: Glucose, Fructose. Mannose und Galactose anzusehen, 

 doch sind viele Fälle bekannt, in denen auch Hexite, wie Mannit, ferner 

 Pentosen und Methylpentosen (Rhamnose) unter reichlicher Bildung von 

 Milchsäure umgesetzt werden. Es scheint, als ob noch verschiedenartige 

 Prozesse unter dem Begriffe der bacteriellen Milchsäuregärung zusammen- 

 gefaßt würden. 



Dafür spricht auch der Umstand, daß die Milchsäuremikroben nicht 

 w^ahllos Glucose, Mannit und Pentosen verarbeiten, sondern z. B. Bac. 

 bulgaricus wohl Glucose und Galactose vergärt, nicht aber Mannit (12). 



1) H. KÜHL, Pharm. Ztg., 55, 120 (1909). — 2) J. Behrens, zit. von 

 Beijerinck, Zentr. Bakt. II, g, 21 (1902). — 3) A. Ch. Vournasos, Ztsch. an- 

 gewandt, ehem., 15, 172 (1902). — 4) W. Croner u. Cronheim, Berlin, klin. 

 Woch.schr., 42, 1080 (1905). W. Thomas, Ztsch. physiol. Chem., 50, 540 (1907). 

 — 5) C. Reichard, Pharm. Zentr. Halle, 53, 1 (1912). — 6) R. O. HerzoCx, Lieb. 

 Ann., 351,. 263 (1907). G. Deniges, Bull. See. Chim. (4), 5, 647 (1909). — 7) H. 

 S. Raper, Journ. of Physiol., 32, 216 (1905). — 8) Effront, Compt. rend., 154, 

 1296 (1912). — 9) Vgl. u. a. S. Suzuki u. Hart, Journ. Amer. Chem. Soc, j/, 

 1364 (1909). — 10) O. V. FÜRTH u. Charnas, Biochem. Ztsch., 26, 199 (1910). 

 E. Jerusalem, Ebenda, 12, 861, 379 (1908). W. Sobolewa vi. Zaleski, Ztsch. 

 physiol. Chem., 6g, 441 (1910). J. Mondschein, Biochem. Zt.sch., 42, 91, 105 

 (1912). — 11) D. Ganassinl Boll. Chira. Farm., ^<5, 785 (1909); Giern. Farm. 

 Chim., 61, 540 (1912). — 12) Bertrand u. Duchacek, Compt. rend., 148, 1338 

 (1909); Biochem. Ztsch., 20, 100 (1909). 



