354 Siebentes Kapitel: Die Resorption von Zucker u. Kohlenhydraten durch Pilze. 



von etwas Glucose nicht auskeimt. Bis zu einem gewissen Grade lassen 

 sich jene Pilze, welche kein Invertin produzieren, zur Trennung von Saccha- 

 rose und Invertzucker benützen (1 ). Am besten kennt man das Invertin 

 der Sproßpilze, die fast sämtlich Rohrzucker verarbeiten. Nach Hansen (2) 

 ist Pichia membranaefaciens auf Rohrzucker unwirksam. Hingegen wurde 

 Invertin auch in der roten Hefe gefunden (3), ferner in Sakehefe (4) sowie in 

 dem Parasiten Saccharomycopsis guttulata (5). Von den älteren Chemikern 

 machten schon Baudrimont und Dubrunfaut, sowie Liebig (6) auf das 

 Hefeinvertin aufmerksam. Berthelot (7) gewann zuerst ein rohes Enzym- 

 präparat durch Fällung des wässerigen Hefeextraktes mit Alkohol. Später 

 befaßten sich Hoppe-Seyler, Gunning, Donath und Barth (8) mit dem 

 Hefeinvertin. Besonders nach vorhergehendem Trocknen diffundiert das 

 Enzym aus den Hefezellen sehr reichUch, und man gewinnt auch jetzt noch 

 die Enzympräparate aus der Hefemazerationsflüssigkeit. In früherer Zeit 

 wurde es überhaupt in Abrede gestellt, daß Invertin aus gesunden Pilz- 

 zellen austrete (9). Doch ist von Pantanelli nachgewiesen, daß bei Hefe 

 und Mucor tatsächlich eine Sekretion von Invertin anzunehmen ist. We- 

 nigstens in der ersten Entwicklungswoche ist bei Mucor der Enzymaustritt 

 ein normaler Sekretions Vorgang (10). Nach Euler ist bei der Invertin- 

 bildung die maximale Wirkung der Kulturflüssigkeit bei günstigen Er- 

 nährungsbedingungen in etwa 25 Stunden erreicht, ob man die Hefe mit 

 Saccharose vorbehandelt hat oder nicht (11). Bemerkenswert ist der Ein- 

 fluß, welchen die Gegenwart von Kolloiden, wie Gelatine, Gummi 

 arabicum, Pepton in der Nährflüssigkeit auf die Invertinausscheidung 

 nach den Erfahrungen von Pantanelli (12) ausübt. Von der Viscosität 

 hängt diese Wirkung, die bestimmt auf den Sekretionsvorgang und nicht 

 auf die Enzymreaktion selbst zu beziehen ist, nicht allein ab. Während bei 

 den genannten drei Kolloiden der Einfluß ein hemmender ist, wirkt SiOg- 

 Zusatz fördernd. Nichtelektrolyte, die die Plasmahaut leicht passieren, 

 fördern die Invertinsekretion, während schwer permeierende Nichtleiter, 

 wie Zucker, die Invertinsekretion vermindern. Javillier (13) fand bei Asper- 

 gillus nach Weglassung von Zinksalz aus der Nährlösung die Invertinpro- 

 duktion stark vermindert. Alle Untersucher stimmen aber darin überein, 

 daß Zufügung von Rohrzucker oder Weglassung desselben aus der Nähr- 

 lösung keinen oder nur einen ganz geringen Einfluß auf den Grad der In- 

 vertinproduktion nimmt (14). Verschiedene Forscher gaben an, daß bei 

 Aspergillus Oryzae die Invertinsekretion durch Neutralsalze herabgesetzt 

 werde (15), Die von Fernbach (16) angegebenen Wirkungen von schlechter 



1) Pellet u. Poirault, Bull. Assoc. Chim. Sucr. 23, 639 (1906). — 2) Hansen, 

 Compt. rend. Carlsberg, 2, 144. H. van Laer, Zenlr. Bakt. II, 14, 550 (1905). — 

 3) Fermi u. Montesano, Zentr. Bakt. II, /, 482 (1895). — 4) Takahashi, Chem. 

 Zentr. (1902), //, 391. — 5) Buscalioni u. Casagrandi, Malpighia, 12, 59 (1898). 



— 6) Baudrimont u. Dubrunfaut, Journ. prakt. Chem., 14, 334. Liebig, Lieb. 

 Ann., 93. — 7) Berthelot, Compt. rend., 50, 980 (1860). — 8) Hoppe-Seyler, 

 Ber. Chem. Ges., 4, 810 (1871). Gunning, Ebenda, 5, 821 (1872). E. Donath, 

 Ebenda, 8, 795 (1875). M. Barth, Ebenda, //, 474 (1878). Donath, Ebenda, p. 1089. 



— 9) C. O'Sullivan, Journ. Chem. Soc. (1892), /, 593. — 10) E. Pantanelli, 

 Ann. di Botan., 3, 113 (1905); 5, 355 (1907). — 11) H. Euler u. H. Meyer, 

 Ztsch. physiol. Chem., 79, 274 (1912). A. Fernbach, Ann. Inst. Pasteur, 4, 1, 641 

 (1890). — 12) Pantanelli, Accad. Line. Roma (5), 15, I, 377 (1906). — 13) Ja- 

 villier, Compt. rend., 154, 383 (1912). — 14) G. Grezes, Ann. Inst. Pasteur, 26, 

 556 (1912). Euler, Pantanelli, 1. c. — 15) Fernbach, 1. c. Pottevin u. 

 Napias, Soc. Biol. (10), 5, 237 (1898). Kellner, Mori u. Nagaoka, Ztsch. physiol. 

 Chem., 14, 297 (1890). — 16) A. Fernbach, 1. c. 



