368 Siebentes Kapitel: Die Resorption von Zucker u. Kohlenhydraten durch Pilze. 



Chlamydomucor Oryzae soll nach Prinsew Geerligs nur Dextrin und nicht 

 Stärke verarbeiten. Die anderen Pilze zersetzen Stärke und Dextrin gleich- 

 mäßig gut. 



Man kennt allerdings erst von gewissen Schimmelpilzen die amylo- 

 lytischen Enzyme genauer. Aus Hutpilzen hat man wiederholt Diastase 

 nachgewiesen (1), doch scheint nur die Untersuchung von Zellner über die 

 Fermente holzbewohnender Pilze etwas näher auf die Sache einzugehen (2). 

 Näher bekannt ist besonders die Aspergillusdiastase von niger, glaucus 

 und besonders Oryzae, von der unter dem Namen „Takadiastase" ein halt- 

 bares, gut wirksames Präparat im Handel ist, das übrigens eine ganze Reihe 

 von anderen Enzymen enthält (3). Auch die PenicilHumarten verzuckern 

 kräftig Stärke. Darunter ist nach Gosio (4) Pen. brevicaule, bei dem man 

 phenolartige Stoffwechselprodukte des Stärkeabbaues für die Erregung 

 der Pellagra verantwortHch machen wollte. Ferner sind energische Stärke- 

 verzehrer die Mucorineen, von denen außer den gewöhnhchen einheimischen 

 Mucorarten M. Rouxii (der früher als „Amylomyces Rouxii" bezeichnete 

 Schimmelpilz), ferner M. Cambodja, M. alternans Erwähnung verdienen (5). 

 Das gleiche gilt von Rhizopusarten (6). Das Mutterkornsclerotium ist gleich- 

 falls diastasehaltig (7). 



Die Art der Diastaseproduktion ist bisher nur für Mucor durch Panta- 

 NELLI und Bruschi (8) genauer verfolgt worden. Hier zeigt es sich, daß in 

 der Kulturflüssigkeit zunächst ein Stärke verflüssigendes Enzym erscheint, 

 welches wohl durch echte Sekretion in die Kulturflüssigkeit austritt. Später 

 kommt reichhch Stärke verzuckerndes Enzym und dann auch Proamylase 

 hinzu. Regulatorische Einflüsse scheinen sich auf Diastasebildung besonders 

 häufig geltend zu machen. Pfeffer und Katz fanden zuerst (9), daß reichliche 

 Zuckerdarreichung bei Schimmelpilzen und Bacterien die Diastasebildung 

 hemmt. Schon in 1,5% Rohrzuckerlösung wird von Penicilhum Stärke 

 nur sehr wenig konsumiert, und 10—15% Saccharose unterdrückt die Diastase- 

 bildung ganz. Traubenzucker, etwas weniger auch Maltose, haben denselben 

 Effekt. Für Mucor gelten nach Pantanelli ähnüche Beziehungen. Katz 

 zeigte auch, daß man durch Ausfällen der produzierten Diastase durch Tannin 

 die Enzymbildung beträchtüch steigern kann. Die Stickstoffnahrung hat 

 auf die Diastasebildung nach den Erfahrungen von Katz, Cavazzani und 

 Fermi ebenfalls Einfluß auf die Diastasebildung, wenn auch die Angaben 

 von Saito(IO), daß bei Ernährung mit (NH4)2S04 auf stärkefreiem Substrate 

 bei Asperg. Oryzae die Diastase ganz ausbleibt, durch die Untersuchungen 



1) Z. B. für Lycoperdon bovista: J. Blanksma, Chem. Weekbl., w, 96 

 (1913). — 2) J. Zellner. Monatsh. Chem., jo, 231 (1909). Boletus: Eüler, Ark. f. 

 Kerai, /, 365 (1906). Polyporus: Buller, Ann. of Botany, 20, 51 (1906). Coprinus: 

 Weir, Flora, 103, 263 (1911). — 3) Aspergillus: DüClaux, Chimie biolog., p. 193, 

 195, 220. Atkinson, Proceed. Roy. Soc, J2, 299 (1881). Büsgen, Ber. Botau. 

 Ges., 3, LXVl (1885). Kellner, Mori u. Nagaoka, Ztsch. physiol. Chem., 14, 

 297 (1889). Effront, Compt. read., 115, 1324 (1892). Asp. batatae: Saito, Zentr. 

 Bakt. II, 18, 30 (1907). — 4) Gosio, Botan. Zentr., 87, 131 (1901); Gaz. chim. ital.. 

 23, 136 (1893). Pen. glaucura: GRÜSS, Festschr. f. Schwendener (1899), p. 189. 



— 5) Amylomyces: Calmette, Ann. Inst. Pasteur, 6, 604 (1892). Sanguinetti, 

 Ebenda, //, 264 (1897). Vuillemin, Botan. Zentr., 89, 688; 90, 159 (1902); Rev. 

 MycoL, 24, 45 (1902). Cambodja: Chrzacz, Zentr. Bakt. II, 7, 326 (1901). Alter- 

 nans: Gayon u. Dubourg, Ann. Inst. Pasteur, 7, 532 (1887). — 6) Nakazawa, 

 Zentr. Bakt., 24, 482 (1909). — 7) J. Schlndelmeiser, Apoth.-Ztg., 24, 837 (1909). 



— 8) E. Pantanelli u. Bruschi, Ann. di Botan., <?. 133 (1910). — 9) Pfeffer, 

 Ber. kgl. sächs. Ges. (1897). J. Katz, Jahrb. wiss. Botan., j/, 599 (1898). — 10) K. 

 Saito, Woch.schr. f. Brauerei, 27, 181 (1910); Zentr. Bakt., 17, 20 (1906). 



