ß36 Einundzwanzigstes Kapitel: Das Zellhautgerüst der Pflanzen. 



Nitroverbindung (1). Über die physikalischen Konstanten des Chitins sind 

 die Angaben von Sollas und Irvine zu vergleichen (2). 



VAN WissELiNGH hat eine mikrochemische Methode zum Chitinnach- 

 weise angegeben, welche darauf beruht, daß sich chitinhaltige Zellmembranen 

 nach Erhitzen mit Kahlauge im geschlossenen Röhrchen auf 180° und Aus- 

 waschen der Lauge mit 90%igem Alkohol, mit JodjodkaH und sehr verdünnter 

 H2SO4 rotviolett färben, indem das Chitin in Chitosan übergeführt wurde. 

 Mit Hilfe dieser Reaktion wurden durch Wisselingh und Wester (3) die 

 Pilze erschöpfend bearbeitet und viele frühere auf Grund mikroskopischer 

 Färbungsversuche aufgestellte Meinungen berichtigt. Nach diesen Unter- 

 suchungen besteht kein Zweifel, daß Chitin im Pflanzenreiche auf die Pilze 

 und Bacterien beschränkt ist, bei den Pilzen aber das weitaus verbreitetste 

 Zellwand material bildet. Nur die Gruppen der Peronosporaceen und Sapro- 

 legniaceen haben nach Wisselingh Cellulosemembranen, während die Muco- 

 rineen, Erysipheen, Aspergillus, die Pyrenomyceten und Discomyceten, 

 sowie Ustilagineen und Uredineen, endhch auch die Hymenomyceten und 

 Gasteromyceten regelmäßig Chitinmembranen ausbilden. Auch die Mem- 

 branen von Synchytrium taraxaci und Empusa muscae sind chitinhaltig. 

 Hingegen führen die stark quellbaren Zellhäute der Tremelhneen und Dacryo- 

 myceten neben ein wenig Chitin einen noch unbekannten Stoff als Haupt- 

 bestandteil der Zellhaut. Geaster fornicatus enthält nach Wisselingh im 

 äußersten und innersten Peridium und im Capilhtium eine Substanz, welche 

 die Cellulosereaktion mit Jod und H2SO4 gibt, jedoch nicht wie Cellulose 

 dem Erhitzen mit Glycerin auf 250*^ widersteht, das „Geasterin". Unbekannt 

 ist auch noch die Ursache der sogenannten Verkorkung bei Daedalea quercina. 

 Mit diesen Feststellungen fallen namentUch die von Mangin (4) auf 

 die mikrochemischen Färbungen mit Rutheniumrot, Brillantblau usw. ge- 

 gründeten Ansichten hinweg, wonach Callosc, ein meist nur mikrochemisch 

 erschlossener, sonst ganz problematischer Stoff, sowie pektinartige Wand- 

 substanzen bei Pilzen verbreitet seien. Zum Teil dürften der Callose sowohl, 

 wie der von Tanret(5) als ein Hydratationsprodukt der Callose angesehenen 

 Fongose, Hemicellulosen und Pentosane zugrunde hegen, die bei den Pilzen 

 noch unzureichend erforscht sind. Die ,, Callose" aus Bornetina Corium be- 

 schreibt Mangin als unlösHch in Kupferoxydammoniak, zerstörbar durch 

 Glycerin bei 300°; sie gibt keine Jodreaktion und hefert bei der Hydrolyse 

 Traubenzucker. 



Voswinkel gelang es, in Cantharellus cibarius und anderen Hut- 

 pilzen ein Xylose lieferndes Gummi nachzuweisen. Daß Pentosane tat- 

 sächlich bei Pilzen häufig vorkommen, ist durch Wichers und Tollens 

 sichergestellt (6). Es lieferten an Pentosan: Polyporus pinicola 5,25 bis 

 5,71%, Fernes fomentarius 3,34%, Trametes odorata 2,52%, Daedalea 

 quercina 2,93 %, Xylaria polymorpha 1,21 %, Schizophyllum commune 

 3,01%, Paxillus pannoides 2,61%, Pholiota lucifera 3,27%, Lenzites 

 flaccida 6,73 %, Coniophora cerebella 4,1 %, Polyporus fulvus 2,9 %, 

 pinicola 5,15 %, hirsutus 5,87 %, Ganoderma applanata 3,24 % und Poly- 



1) V. FÜRTH u. Scholl, Hofmeisters Beitr., 10, 188 (1907). — 2) Sollas, 

 Proceed. Roy. Soc, 79, B, 474 (1907). J. C. Irvine, Journ. Chem. Soc, 95, 564 

 (1909). — 3) H. Wester, Diss. (Groningen 1909); Arch. Pharm., 247, 282 (1909); 

 Zoolog. Jahrb. Syst. Abt., 28, 531 (1910); Ztsch. f. Botan., 2, 510 (1910). Zur Mikro- 

 chemie des Chitins auch O. Tunmann, Pflanzenmikrochemie p. 608 (Berlin 1913). — 4) L. 

 ManCxIN, Compt. rend., 117, 816 (1893); 151, 279(1910); Bull. Soc. Bot, 38, 1 (1893); 

 41, 373 (1894); Journ. de Bot., 13, 209 (1899). — 5) C. Tanket, Compt. rend., 151, 

 447 (1910). — 6) Wichers u. Tollens, Journ. f. Landw., 58, 238 (1910). 



