792 Neunundzwanzigstes Kapitel: Sterinolipoide der Pflanzen. 



Methylisohexylketon : CH 3 • CO • CH2 • CHg • CH2 • CH<^^ 3 



CH3 



Methylheptenon : GH3 • CO • CH, • CHg • CH : C <c!^^3 



CH3 



Auch bieten die Farbenreaktionen der Cholesterine Vergleichspunkte 

 mit Harzsäuren, nach Mach (1) vor allem mit der Abietinsäure CigHggOg 

 dar, einem Retenabkömmling , welcher Liebermanns Cholestolreaktion 

 gleichfalls gibt. Doch fehlen alle bestimmten Anhaltspunkte zu einer Her- 

 leitung der Cholesterine von den Terpenen nicht nur in chemischer, sondern 

 auch in physiologischer Richtung. Die von Schrötter (2) geäußerten 

 Ansichten über die Cholesterinkonstitution mußten vom Autor selbst zurück- 

 gezogen werden. Es besteht aus allen diesen Gründen derzeit kein Anlaß, 

 die Cholesterinkörper biochemisch an die Betrachtung der Terpene und 

 Harze anzugliedern. 



Hingegen ist die physiologische Parallele mit den übrigen komplexen 

 Lipoiden der Zelle unleugbar da; die Verbindung mit hochmolekularen 

 Fettsäuren, die ausgesprochene Sauerstoffaufnahme, geringe Quellbarkeit 

 in Wasser haben sie mit den Phosphatiden gemein. Overton hat in seinen 

 denkwürdigen Untersuchungen über die Stoffaufnahme in Zellen auch an 

 die Cholesterine als Konstituenten der üpoiden Plasmahaut in erster Reihe 

 gedacht. Allerdings mögen manche Phytosterinalkohole in Rinden, Milch- 

 säften, Samenschalen bereits dem destruktiven Stoffwechsel angehören. 



Zur quantitativen Bestimmung der Cholesterine verfährt man nach 

 Schulze und Barbieri (3) bei Pflanzenmaterial am besten, indem der 

 Ätherextrakt mit alkoholischer KOH verseift wird und das Seifengemisch 

 nach Verjagen des Alkohols mit Wasser aufgenommen, und nun das 

 Cholesterin mit Äther ausgeschüttelt wird. Nach Ritter (4) hat man dabei 

 die Seifenmassen gut mit NaCl zu vermengen. Die Rückstände der Äther- 

 ausschüttelung werden in sehr wenig heißem Alkohol gelöst, aus welchem 

 dann beim Erkalten die Cholesterinkörper krystallinisch ausfallen. Die von 

 Obermüller (5) angewendete Verseifung mit Natriumäthylat soll nach 

 Corper(6) Fehler in der Cholesterinbestimmung bedingen. Lewkowitsch(7) 

 schlug vor, Cholesterin mit Essigsäureanhydrid vollständig zu acetyheren 

 und durch Feststellung der Verseif ungszahl des Acetylproduktes das Chole- 

 sterin zu bestimmen. In Fetten aber ist die Acetylzahl zur quantitativen 

 Cholesterinbestimmung nach Nukada (8) unverwendbar. Weiter hat man 

 die Bromierung, die Jodaddition (Jodzahl 68,3) und auch die Saponin- 

 fällungen zur Cholesterinbestimmung herangezogen. Der Cholesteryl- 

 benzoesäureester wurde von Doree und Gardner (9) zur Ausfällung des 

 Cholesterins verwendet. Endlich sind colorimetrische Verfahren ange- 

 geben (10). 



1) H. Mach, Monatsh. Chem., 15, 627 (1895). Seifert, Ebenda, 14, 726 

 (1893). Thoms, Arch. Pharm., 235, 39 (1896). Walitzky, Ber. Chem. Ges., 9, 

 1310 (1876); 18, 1808. Latschinoff, Ebenda, 12, 1526. Stein, Diss. (Freiburg 1905). 

 — 2) H. Schrötter, Monatsh. Chem., 2g, 245, 749 (1908); 30, 395 (1909). — 3) E. 

 Schulze u. Barbieri, Journ. prakt. Chem., 25, 159 (1882). Übertragen der Ver- 

 seif ungsmethode für die Cholesterinbestimmung in tierischen Geweben. A. Grigaut, 

 Soc. Biol., ;/, 441, 513 (1911); 72, 1046 (1912). — 4) E. Ritter, Ztsch. physiol. 

 Chem., 34, 430 (1902). Modifikation: H. J. Corper, Journ. Biol. Chem., 12, 197 

 (1912). — 5) K. Obermüller, Ztsch. physiol. Chem., 16, 143 (1892). — 6) H. J. 

 Corper, Journ. Biol. Chem., //, 37 (1912). — 7) J. Lewkowitsch, Ber. Chem. Ges., 

 25, 65 (1892). — 8) Nukada, Biochem. Ztsch., 14, 424 (1908). — 9) Doree u. 

 Gardner, Proceed. Roy. Soc, 81, 113 (1909). — 10) P. G. Weston u. Kent, 

 Journ. Med. Research, 26, 523 (1912). 



