262 Neununddreißigstes Kapitel: Eiweißresorption bei der Samenkeimung usw. 



Organen 31,81%, in den Cotyledonen nur 7,62% der Trockensubstanz an 

 Asparagin. Auch Prianischnikow (1 ) fand bei Faba und Vicia sativa 

 in den Cotyledonen bedeutend weniger Asparagin als in den Achsenteilen. 

 Ferner bildet bei den Achsenteilen der im Asparagin enthaltene N einen 

 weitaus größeren Anteil vom Gesamt-N als bei den Cotyledonen. 



Das Asparagin, über dessen chemische Eigenschaften wir bereits aus 

 älterer Zeit eine Monographie von Plisson und Henry (2) besitzen, ist ein 

 viel studierter und chemisch sehr interessanter Stoff, der schon aus ein- 

 geengtem Wasserextrakt von Keimlingen mühelos in großen Krystallen 

 leicht zugänglich ist und daraus rein erhalten werden kann. Von Schulze (3) 

 wurde neben der Krystallisiermethode noch die Fällbarkeit mit Mercüri- 

 nitrat als Mittel zur Isolierung des Asparagins angegeben und verwendet. 

 Ein viel benutztes Hilfsmittel, um das Asparagin besonders in Geweben 

 und Schnitten nachzuweisen, ist das Einlegen der letzteren in starken 

 Alkohol, wodurch es in den Zellen reichlich auskrystallisiert (4). 



Nach MoULiN (5) gibt Asparaginlösung, mit Resorcin und H2SO4 

 erwärmt, eine gelbgrüne Färbung; das Reaktionsgemisch zeigt nach Ver- 

 dünnen mit Wasser und Zufügen von Soda Fluoreszenz. Zur Asparagin- 

 bestimmung hat man sich der von Sachsse und Kormann angegebenen 

 Methode der Zersetzung mit HNO 2 bedient, sowie der Ammoniakentwicklung 

 beim Erwärmen mit starker Alkalilauge (Meunier). Asparagin ist im Gegen- 

 satze zur Bernsteinsäure als Substanz mit einem assymetrischen Kohlen- 



NHa^^/CH .CONH2 

 Stoffatom: C ein racemischer Stoff. Die beiden 



H/ \COOH 

 optisch aktiven Modifikationen sind nach Piutti (6) in Viciakeimlingen 

 gleichzeitig vorhanden, doch besteht die Hauptmenge aus der linksdrehenden 

 Komponente. Es bedarf allerdings noch der Untersuchung, ob nicht, wie 

 es wahrscheinlich ist, d-Asparagin bei der Präparation durch Racemisierung 

 entsteht (7). Der Theorie gemäß ist die eine Form, wie bei der Traubensäure, 

 linkshemiedrisch, die andere rechtshemiedrisch und man kann beide durch 

 Auslesen der Krystalle trennen. d-Asparagin ist in kaltem Wasser etwas 

 besser löslich als 1-Asparagin und schmeckt im Gegensatze zu dem fade- 

 schmeckenden 1-Asparagin süß. Pasteur hat hieran die Bemerkung ge- 

 knüpft, daß sich die Geschmacksnervensubstanz wie ein optischaktiver 

 Stoff zu den beiden Asparaginen verhält, und deswegen mit ihnen verschieden 

 reagiert. Piutti wandelte die beiden Asparagine über den Weg der Bildung 

 von inaktiver Asparaginsäure ineinander gegenseitig um, und Walden (8) 

 erreichte dies durch Vermittlung der Halogenbernsteinsäure. 



Durch die verschiedensten hydrolytisch wü-kenden Einflüsse, schon 

 durch Kochen mit Wasser, sehr leicht bei höherem Druck, wird das As- 

 paragin unter Ammoniakabspaltung verseift (9). Jolles(IO) hat angegeben, 



1) D. Prianischnikow, Landw. Vers.stat., 45, 52; Ber. bot. Ges., 22, 35 

 (1904). — 2) Plisson u. Henry f., Ann. Chim. et Phys. (2), 45, 304 (1830). 

 PiRiA, 1. c. Dessaignes, Journ. prakt. Chem., 50, 289 (1850). — 3) Schulze, 

 Ber. chem. Ges., 15, 2855 (1882). — 4) Pfeffer, 1. c. Borodin, Botan. Ztg. (1882), 

 p. 589; (1878), p. 805. Zimmermann, Botan. Mikrotechn., p. 80. H. Molisch, 

 Mikrochem. d. Pfl., Jena 1913, p. 103. — 5) L. Moulin, Journ. Pharm, et Chim. 

 (6), 3, Ö43 (1896). Saccharin gibt diese Reaktion ebenfalls. — 6) A. Piutti, Gazz. 

 chim. ital., 17, 126 (1887); Ber. chem. Ges., 19, 1691 (1886); 20, Ref. 510 (1887). 

 Compt. rend., 103, 134 (1886). Chem. Zentr. (1887), p. 510; (1888), II, 1529. — 

 7) Hierzu: H. Pringsheim, Ztsch. physiol. Chem., 65, 89 (1910). F. Ehrlich u. 

 F. Lange, Biochem. Ztsch., 54, 256 (1913). — 8) P. Walden, Ber. chem. Ges., 28, 

 2766 (1895). — 9) Vgl. Schulze, Landw. Vers.stat., 29, 233; Ber. chem. Ges., 16, 

 1872 (1883). — 10) A. Jolles, Ebenda, 34, 386 (1901); Pflüg. Arch., 84, 446 (1901). 



