Sechzigstes Kapitel: Die Senföle.' 187 



worin der Schwefel eine merkaptanartige Bindung besitzt, wenn man aus 

 der leichten Bildung von Hg- und Ag- Verbindungen des Sinigrins auf ein 

 derartiges Verhältnis schließen darf (1). 



Für die quantitative Bestimmung des Senföles sind eine Reihe von 

 Methoden angegeben worden. Da bei der Vichfütterung mit Rapspreßkuchen 

 der Gehalt an dem toxisch wirksamen Senföle nicht gleichgültig ist, so sind 

 mit der Senfölbestimmung praktische Interessen verbunden. Um die Er- 

 mittlung brauchbarer Methoden haben sich Dirks, Förster, Smith, 

 ScHLictHT, Gadamer, Grützner, Roeser, Mann, Kuntze, Penau und 

 andere Chemiker verdient gemacht (2). Hierbei bedient man sich entweder 

 der Oxydation des durch vorherige Myrosineinwirkung aus dem Materiale 

 abgespaltenen Senföles mittels alkalischer Permanganatlösung, und bestimmt 

 die gebildete Schwefelsäure, oder man leitet das Senföl in stark ammoniaka- 

 lische Silberlösung, filtriert von dem gebildeten AggS ab, und bestimmt den 

 verbliebenen Überschuß an Silber. Bezüglich der Details sei auf die Original- 

 arbeiten verwiesen. Smith schloß auf den Gehalt an Senföl aus den Zahlen, 

 die er für Ätherschwefelsäuren ermittelte. Er fand, daß die Ätherschwefel- 

 säuren der Rhaphanuskeimlinge bei Dunkelpflanzen rascher abnehmen 

 als bei Lichtpflanzen. Dies entspricht wohl dem rascheren Verbrauche bei 

 gesteigertem Wachstum und der gehemmten Neubildung gepaarter Schwefel- 

 säuren durch die Verdunklung. 



Wester (3) ermittelte aus Düngungsversuchen mit Nährsalzen, daß 

 die erhöhte Darreichung von N, P und K nicht nur die Zahl der produzierten 

 Samen, sondern auch deren Senfölgehalt steigert. Die Ernten an Senföl 

 verhielten sich fast wie 2 : 3. 



Das Senföl aus Rhaphanus wurde mehrfach von Smith, Bertram und 

 Walbaum und Gadamer untersucht (4), und soll von dem Senföl der Bras- 

 sica nigra verschieden sein. 



Brassica Napus enthält nach Sjollema (5) in den Samen ein Glucosid, 

 das das dem Allylsenföl nächst höhere Homologon abspaltet: C4H7 • NCS, 

 Crotonylsenföl. Man hat das, übrigens noch nicht rein dargestellte, 

 Glucosid als Gluconapin bezeichnet. Gleichfalls noch nicht näher bekannt 

 ist das Senfölglucosid aus Cochlearia officinalis, dessen Existenz jedoch 

 durch Gadamer (6) bereits sichergestellt erscheint. Es ist durch Myrosin 

 spaltbar, und liefert, wie schon 1869 durch A. W. Hofmann (7) entdeckt 

 worden ist, Butylsenföl C4H9 • NCS, und zwar sekundäres Butylsenföl 



CH C H 



der Konstitution: i|-^^*^nVs Auch Cardamine amara enthält nach 



1) Stenger. Beweis dür die Sinigrinfonnel von Gadamer bei W. Schneider 

 u. Wrede, Ber. ehem. Ges., 47, 2225 Q914). — 2) V. Dirks, Landw. Vers.stat., 

 28, 179 (1882V 0. Förster, Ebenda, 75, 209 (1888). W. J. Smith, Ztsch. 

 physiol. ehem., 12, 427 (1888). A. Schlicht, Ztsch. analyt. Chera., 30, 661 (1892); 

 Landw. Vers.stat., 41, 176; Chem. Zentr. (1903), I, 854. B. Grützner, Arch. 

 Pharm., 237, 185 (1899). P. Roeser, Chem. Zentr. (1902), I, 1254. C. Mann, 

 Ai-ch. Pharm., 240, 161 (1902). E. Haselhoff, Ztsch. Unt. Nähr. u. Gen.mittel. 

 (1898), p. 235. G. Jörgensen, Chem. Zentr. (1898), II, 927. R. Firbas, Pharm. 

 Post, 37, 33 (1904). A. Vuillemin, Just 1901, II, 880. Hartwigh u. Vuillemin, 

 Apoth.-Ztg., 20, 162 (1905). M. Kuntze, Arch. Pharm., 246, 68 (1908). H. Penau, 

 Journ. Pharm, et Chim. (7), 6, 160 (1912). — 3) D. H. Wester, Ber. pharm. Ges., 

 24, 123 (1914). — 4) J. Bertram u. H. Walbaum, Journ. prakt. Chem., 50, 

 555 (1894). Gadamer, Arch. Pharm., 237, 507 (1899). — 5) B. Sjollema, Chem. 

 Zentr. (1901), II, 299. Ter Meulen, Rec. trav. chim. Pavs Bas, 29, 444 (1905). 

 — 6) Gadamer, Arch. Pharm.. 237, 92 (1899); 23g, 283 (1901). Pienbroek, u. 

 PiNKHOF, Pharm. Weekbl., 5/, 998 (1914). J. Blanksma, Ebenda, p. 1383. — 

 7) A. W. Hofmann, Ber. chem. Ges., 2, 102 (1869); 7, 508 (1874). 



